Catalogación en la publicación – Biblioteca Nacional de Colombia

Barrios Yepes, Alejandra, autora

Catálogo de hongos Agaricales de Unimagdalena / Alejandra Barrios Yepes [y otros tres]. -- Primera edición. -- Santa Marta : Editorial Unimagdalena, 2024.

1 recurso en línea : archivo de texto: EPUB. -- (Colección ciencias naturales. Serie biología)

Incluye índice de especies identificadas en orden alfabético y glosario -- Incluye referencias bibliográficas.

ISBN 978-958-746-697-3 (PDF) -- 978-958-746-698-0 (ePUB)

1. Universidad del Magdalena - Aspectos ambientales - Catálogos 2. Hongos - Identificación - Santa Marta - Catálogos 3. Hongos - Clasificación - Santa Marta - Catálogos I. Abaunza Suárez, Cristian Fabián, autor II. Luna Fontalvo, Jorge, autor III. Negritto, María A., autora

CDD: 579.60986116 ed. 23

CO-BoBN– a1136440

Primera edición, marzo de 2024

2024 © Universidad del Magdalena. Derechos Reservados.

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Corrección de estilo: Juan Diego Mican González

Santa Marta, Colombia, 2024

ISBN: 978-958-746-697-3 (pdf)

ISBN: 978-958-746-698-0 (epub)

DOI: https://doi.org/10.21676/9789587466973

Hecho en Colombia - Made in Colombia

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Las opiniones expresadas en esta obra son responsabilidad de los autores y no compromete al pensamiento institucional de la Universidad del Magdalena, ni genera responsabilidad frente a terceros.

Agradecimientos

Los autores expresan su agradecimiento:

A la Vicerrectoría de Investigación de la Universidad del Magdalena, por la financiación del proyecto «Macrohongos, Basidiomycota, orden Agaricales presentes en el campus de la Universidad del Magdalena».

Al Ministerio de Ciencia, Tecnología e Innovación (Minciencias), por el proyecto «Fortalecimiento de las colecciones biológicas de líquenes, briófitos y macrohongos del Centro de Colecciones Biológicas de la Universidad del Magdalena (CBUMAG)», de la Convocatoria 1030-2021 para Expediciones Científicas y Colecciones Biológicas.

A los integrantes del Grupo de Investigación en Manejo y Conservación de Fauna, Flora y Ecosistemas Estratégicos Neotropicales MIKU, al «Team Fungi» y, en especial, a Luis Atencia y Gabriel Santos.

Al Dr. Ricardo Valenzuela Garza, del Instituto Politécnico Nacional de México, por contribuir con la identificación taxonómica de las especies.

Además, los autores agradecen a los evaluadores anónimos que proporcionaron valiosas críticas y comentarios que contribuyeron a mejorar el manuscrito.

Prólogo

El presente catálogo de hongos Agaricales del campus de la Universidad del Magdalena es un comienzo, un punto de partida, para darle a Colombia la relevancia que le corresponde como una de las doce naciones más biodiversas del mundo. Este enorme compromiso del equipo de trabajo es a largo plazo, y para asumirlo será necesario adelantar estudios sistemáticos en la región Caribe, teniendo en cuenta la diversidad de hábitats y priorizando la formación de capital humano. Al mismo tiempo, este propósito requiere contar con más taxónomos especializados y enfocados en el área de la micología y fortalecer las colecciones biológicas depositadas en el Centro de Colecciones Biológicas de la Universidad del Magdalena (CBUMAG), entre otras estrategias.

Para la realización de este catálogo se contó con el apoyo financiero de dos proyectos. El primero, titulado «Macrohongos, Basidiomycota, orden Agaricales presentes en el campus de la Universidad del Magdalena», estuvo financiado por el Fondo de la Vicerrectoría de Investigación de dicha institución (Fonciencias), dentro de la convocatoria para financiación de trabajos de grado (Resolución 763 de 2018). Este trabajo permitió recolectar y caracterizar las especies de los hongos encontradas en diferentes sitios del campus de la universidad.

Entretanto, el segundo proyecto, «Fortalecimiento de las colecciones biológicas de líquenes, briófitos y macrohongos del Centro de Colecciones Biológicas de la Universidad del Magdalena (CBUMAG)», fue financiado con la Convocatoria 1030-2021 para Expediciones Científicas y Colecciones Biológicas del Minciencias. Este permitió iniciar y consolidar la colección micológica que forma parte del CBUMAG.

Asimismo, se destaca la colaboración del Dr. Ricardo Valenzuela Garza, profesor e investigador del Instituto Politécnico Nacional de México y curador de la Colección de Hongos de la Escuela Nacional de Ciencias Biológicas, a quien se agradece su disposición para compartir su experiencia, su conocimiento y su tiempo de manera desinteresada con este trabajo.

Este catálogo es resultado de cuatro años de labor en proyectos de investigación llevados a cabo por un entusiasta equipo de docentes, investigadores y tesistas del Programa de Biología de la Facultad de Ciencias Básicas de la Universidad del Magdalena. La pasión por conocer más acerca de los hongos, en especial de los macromicetos del orden Agaricales, se inició a partir del avistamiento de numerosos ejemplares en varias áreas del departamento, incluso en el entorno natural del propio campus universitario. Luego, la tarea fue tomando forma después de que uno de los autores, Jorge Luna Fontalvo, pasara tiempo en México y Chile entrenándose con especialistas en dicho orden; más específicamente, en la identificación taxonómica de estos macrohongos, pasantía que contó con el apoyo financiero de la institución educativa. Pronto, dos estudiantes tesistas, Alejandra Barrios y Cristian Abaunza, se sumaron al estudio realizando un detallado trabajo de tesis cuya calificación terminaría siendo laureada.

A partir de estas experiencias y sin descanso, Jorge continúa capacitándose, enfocado en los fundamentos teóricos y prácticos de los Agaricales. Esto consolidó la enseñanza de la micología en el Programa de Biología al establecer una nueva línea en el grupo de investigación en Manejo y Conservación de Fauna, Flora y Ecosistemas Estratégicos Neotropicales MIKU, conformando así el denominado «Team Fungi» en la Universidad del Magdalena.

Con el propósito de facilitar la identificación de los Agaricales, el catálogo incluye las descripciones de las especies, las fotografías a color de alta calidad que permiten apreciar aquellos caracteres de valor taxonómico en estos hongos y las ilustraciones de los detalles microscópicos. Adicionalmente, se señalan aquellos que son tóxicos o comestibles. De esta forma se espera propiciar un uso más accesible del catálogo para un reconocimiento de los macrohongos en las salidas de campo con estudiantes, biólogos y aficionados a la micología. Confiamos en que esta obra servirá a los profesionales en las ciencias biológicas y otras afines que se interesen por la funga del departamento del Magdalena y del Caribe colombiano.

Glosario

Agaricales: orden de macrohongos del phylum Basidiomycota que presentan himenóforo con láminas.

Anillo: estructura formada por los restos del velo parcial que queda adherida al estípite del basidioma.

Adnata: término para referirse a las láminas cuando se encuentran unidas al estípite.

Basidio: célula terminal de origen sexual, de la cual surgen las basidiosporas.

Basidiomycota: phylum del reino Fungi que agrupa a hongos que presentan estructuras de reproducción sexual llamadas basidios.

Basidiospora: espora sexual que da origen a las hifas. Varía en su morfología y tamaño.

Cariogamia: fase de la reproducción sexual de los Agaricales. Se presenta en los basidios, donde se fusionan núcleos para dar paso a células diploides.

Cespitoso: formación de grupos tupidos o racimos de cuerpos fructíferos.

Cistidio: célula estéril de tamaño y forma variables que rodea a los basidios. Se encuentra tanto en el himeneo como en otras partes del basidiocarpo.

Clado: grupo que deriva de un ancestro común con sus descendientes.

Concoloro: término utilizado para indicar que presenta el mismo color.

Concrescente: formación simultánea de racimos de basidiocarpos.

Coprófilo: preferencia de sustrato de los macrohongos que crecen sobre el estiércol de animales.

Cortícola: hongo que crece sobre la corteza de los árboles.

Cortina: restos del velo parcial, con aspecto de restos de telaraña en el himeneo y en la base del estípite.

Cuerpo fructífero: también se conoce como basidioma o basidiocarpo. Comúnmente, se le llama «seta». Es la parte del hongo que se puede observar a simple vista.

Decurrente: término para indicar que las láminas se encuentran unidas al estípite, formando un arco.

Desarrollo angiocárpico: formación del basidioma dentro del velo universal.

Desarrollo gimnocárpico: formación del basidioma sin la presencia de velo.

Desarrollo hemiangiocárpico: formación del basidioma en la que el velo queda reducido en el anillo o en el ápice del píleo, formando la cortina. Puede haber velo universal que forma la volva.

Descarga balistospórica: mecanismo de liberación activa de las basidiosporas ocasionada por la gota de Buller.

Escama: restos del velo universal en placas que quedan sobre el píleo y el estípite.

Escuámula: escama recurvada.

Esporada: conjunto de esporas desprendido del himenio maduro. Exhibe el color de las esporas mediante una impronta de las láminas sobre un papel. Es de importancia taxonómica.

Esporoma o esporóforo: equivalente al cuerpo frutífero, estructura reproductiva de los macrohongos visible al ojo humano.

Esterigma: estructura alargada del basidio que sostiene las basidiosporas.

Estípite: comúnmente, se le conoce como el pie del basidioma, el cual sostiene el píleo o sombrero del hongo.

Estriado: término que hace referencia a la ornamentación que presenta el píleo.

Fíbula: del latín libula («hebilla», «broche»), se refiere a la estructura hifal con forma de puente que conecta a dos células del micelio dicariótico en los macrohongos del phylum Basidiomycota.

Folícola: preferencia de sustrato de los macrohongos por las hojas de plantas.

Gota de Buller: formación de una pequeña gota de agua en el esterigma que, al entrar en contacto con la basidiospora, la expulsa con una aceleración superior a 25.000 g fuera del himenio.

Gregario: forma de crecimiento de los basidiomas en grupos y en grandes cantidades.

Hialino: aspecto transparente o translúcido.

Hifa: estructura filamentosa y tubular originada por las esporas. Es la unidad estructural del micelio.

Himenio: también conocido como himenóforo. Es la parte fértil del esporoma formada por láminas en el caso de los Agaricales, donde se encuentran los basidios.

Humícola: preferencia de sustrato de los macrohongos por materia orgánica de origen vegetal.

Lamélula: lámina de corta longitud que está distante del estípite.

Lámina: estructura en forma de placa vertical que se encuentra en la parte inferior del píleo y forma el himenio.

Lignícola: preferencia de sustrato de los macrohongos que se desarrollan sobre la madera o troncos en descomposición.

Macromiceto: también llamado macrohongo, es un hongo que forma estructuras visibles al ojo humano.

Margen: borde del píleo y láminas. Puede variar en la forma y en la contextura.

Micelio: grupo o conjunto de hifas que conforman un talo.

Micelio primario monocariótico: aglomeración de hifas que se da luego de la germinación de las esporas.

Micelio secundario dicariótico: unión de dos micelios primarios.

Micoparásito: hongo que vive en un organismo de otra especie (anfitrión) o sobre este y se beneficia al tomar nutrientes a expensas del otro, causando una lesión o daño.

Pellis: también conocida como cutícula, es una capa de hifas en la superficie del basidioma. La pellis ubicada en el estípite se conoce como estipipellis, mientras que la del píleo se llama pileipellis.

Píleo: sombrero del hongo, en el cual se encuentra el himeneo laminar.

Plasmogamia: fase de la reproducción sexual en los hongos en la que se da la unión de dos protoplastos. Es el proceso previo a la cariogamia.

Pleurocistidio: tipo de cistidio que se encuentra en la parte lateral de los himenóforos de algunos macrohongos.

Pratícola: preferencia de sustrato de los macrohongos por los pastizales.

Protoplasto: célula desprovista de pared celular.

Queilocistidio: tipo de cistidio que se encuentra en la parte más distal del himenóforo de algunos macrohongos.

Reactivo de Melzer: reactivo iodado utilizado para observar la reacción química de las esporas, como amiloide o dextrinoide.

Saprófito: preferencia de sustrato de los macrohongos por madera y materia orgánica muerta.

Seta: parte macroscópica del hongo generalmente provista de píleo y estípite.

Simbiontes: organismos involucrados en la simbiosis que tienen una relación de estrecha convivencia de distinta especie con el fin de obtener algún beneficio de esta unión.

Somatogamia: fase de la reproducción sexual de los hongos en la que se unen hifas o células durante la plasmogamia.

Sustrato: material sobre el cual se desarrolla el hongo, siendo este el medio nutritivo en el que vive.

Talo: cuerpo del hongo. Según la funcionalidad, puede ser talo vegetativo o talo reproductivo. Las setas y los mohos presentan talos filamentosos o miceliales.

Terrícola: preferencia de sustrato de los macrohongos por el suelo.

Trama hifal: también se conoce como contexto, y es la parte interna del himenóforo conformada por un conjunto de hifas. Puede ser paralela, entrelazada, bilateral, convergente o sublateral.

Umbonado: protuberancia en el centro del píleo, también conocida como mamelonado.

Velo parcial o interno: estructura que recubre el himenio. En el píleo, el velo parcial queda reducido en un anillo o una cortina.

Velo universal: estructura que recubre todo el basidioma en su etapa inicial. Posteriormente, se rompe con el crecimiento del píleo. En algunos basidiomas, el velo universal se reduce en una volva.

Verruga: estructura en forma de copa localizada en la base del pie de algunos hongos.

Volva: estructura formada por restos del velo universal que permanece en la base de algunos hongos.

Xilófago: preferencia de sustrato de los macrohongos por madera viva.

Simbología y esquemas

Figura 1. Simbología de hongos comestibles y tóxicos

Figura 2. Tipos de píleo

Figura 3. Borde del píleo

Figura 4. Superficie del píleo

Figura 5. Margen del píleo

Figura 6. Unión de láminas al estípite

Figura 7. Borde de las láminas

Figura 8. Espacio entre las láminas

Figura 9. Posición del estípite

Figura 10. Tipos de estípite

Figura 11. Superficie del estípite

Figura 12. Contenido del estípite

Figura 13. Tipos de anillo

Figura 14. Tipos de volva

Figura 15. Estructuras microscópicas

Introducción

Los macromicetos u hongos macroscópicos son, por definición, el conjunto de hongos que forman estructuras reproductivas visibles, conocidas como cuerpos fructíferos o basidiomas, con más de 1 mm de longitud (Ceballos et al., 2009; McKnight y McKnight, 1998). Son de naturaleza efímera, y proceden de un talo o pie formado por hifas primarias y secundarias, que corresponden a su ciclo sexual (Petersen y Hughes, 1999). Estas fructificaciones dependen de condiciones climáticas como las lluvias, humedad y temperatura, aparte del sustrato al que se encuentran asociados y la disponibilidad de nutrientes (Paz et al., 2015; Valenzuela et al., 2013). Son organismos eucariotas y heterótrofos, y presentan una amplia distribución desde climas tropicales hasta ambientes templados (Carranza et al., 2018; Cepero de García et al., 2012).

El phylum Basidiomycota abarca macromicetos que se distinguen por presentar células terminales conocidas como basidios, de las que surgen esporas sexuales llamadas basidiosporas (Hawksworth, 2001). También tienen hifas con un septo (doliporo) y paredes con múltiples capas. La mayoría de sus ejemplares forman hifas con fíbulas (Herrera y Ulloa, 2004; Lodge et al., 2004; Moreno, 2011).

Entre los grupos de organismos que conforman el phylum Basidiomycota se encuentra el orden Agaricales, un grupo monofilético de basidiomicetos del subphylum Agaricomycotina (Cepero de García et al., 2012) con aproximadamente 20.000 especies que constituye el clado más grande de hongos formadores de setas (O’Brien et al., 2005; Pardavé et al., 2012; Taylor et al., 2010). La taxonomía y la filogenia de los Agaricales han sido temas de gran controversia y complejidad debido a su variedad morfológica. No fue hasta hace un poco más de una década que los resultados del análisis multilocus de seis genes, realizado por Matheny et al. (2006), permitió que se reconocieran seis clados que conforman el orden: agaricoide, tricholomatoide, marasmioide, pluteoide, hygrophoroide y plicaturopsidoide.

Los Agaricales desarrollan cuerpos fructíferos o basidiocarpos en forma de paraguas, compuestos esencialmente por un píleo o sombrero, debajo de los cuales está el himenio laminar, que es la parte fértil del basidiocarpo, y un estípite conocido como pie (Franco-Molano et al., 2000; Laessoe, 2005; Largent, 1986) (Figura 16). Algunos ejemplares desarrollan estructuras ornamentales como anillos, volvas, escamas, cortinas o verrugas procedentes de los velos universales y parciales, que dependen del tipo de crecimiento del hongo y poseen valor taxonómico para su identificación (Largent, 1986; Singer, 1986) (Figura 17).

La taxonomía de los macrohongos Agaricales está determinada morfológicamente por presentar himenóforos dispuestos en láminas (Lazo, 2001; Moser, 1983; Pegler, 1983). Entre las características macroscópicas diferenciales que presenta el orden se encuentran el tamaño, la forma y la textura de cada una de las partes del píleo (borde y superficie); el espesor, el borde, el color, la disposición y la inserción de las láminas respecto al pie; la morfología, el color, el aspecto y la consistencia del pie; la presencia o la ausencia de anillo, volvas o cortina, y el color de la esporada, además de cualidades organolépticas como el sabor, el olor y la textura de la carne de la seta (Delgado et al., 2005; Laessoe, 2005).

Figura 16. Estructuras de importancia taxonómica

Figura 17. Morfología de un basidoma agarical

Dentro de las características microscópicas se tienen en cuenta el número de esterigmas que emergen de los basidios, puesto que cada esterigma da lugar a una basidiospora (generalmente, son cuatro —tetraspóricas, aunque también pueden encontrarse bispóricas y trispóricas); la morfología, la ornamentación y la coloración de las basidiosporas; la forma y la ubicación de los cistidios, y la disposición de las hifas en la cutícula (pileipellis), aparte de las reacciones frente a compuestos químicos como el reactivo de Melzer, hidróxido de potasio (KOH) o el rojo congo amoniacal (Coimbra et al., 2013; Moreno y Manjón, 2010; Piepenbring, 2008; Singer, 1986).

Por otro lado, si se tienen en cuenta las preferencias nutricionales, estos hongos pueden clasificarse en saprófitos, xilófagos, parásitos o simbiontes mutualistas (micorrizógenos). Además, según las preferencias ecológicas o sustrato al que se encuentran asociados, se denominan lignícolas, folícolas, terrícolas, corticícolas, humícolas, coprófilos, pratícolas, etc. Finalmente, de acuerdo a la forma de agregación en la que se pueden encontrar, están los solitarios o aislados, los agrupados (gregarios) y los cespitosos o concrescentes (Delgado et al., 2005; Furci, 2013).

Los Agaricales presentan varias formas de desarrollo. El angiocárpico ocurre cuando el basidioma completo se forma dentro de una especie de saco llamado velo universal, que se rompe con el crecimiento del píleo, dejando el himenio expuesto (Moore, 1998; Moser, 1983). Asimismo, existen hongos que no presentan velo universal, sino un velo parcial que cubre solo el himenio y se rompe a medida que el individuo alcanza la madurez, en cuyo caso el desarrollo es hemiangiocárpico. Por otra parte, se conoce como desarrollo gimnocárpico aquel en el que el himenio se forma desnudo o descubierto (Breitenbach y Kränzlin, 1991; Watling, 1975).

El desarrollo completo del basidiocarpo es la primicia del ciclo reproductivo. En el caso de los Agaricales, el proceso inicia cuando las esporas encuentran las condiciones favorables en el ambiente para su germinación, y luego cada una da lugar a la formación de un micelio primario monocariótico constituido por la aglomeración de hifas (Velasco, 2012). Una vez se ha formado el micelio, la reproducción puede ser asexual, mediante la fragmentación de este conjunto de hifas, o en caso opuesto las hifas se extenderán hasta encontrarse con otro micelio primario monocariótico compatible para llevar a cabo la reproducción sexual (Kuhar et al., 2013).

La reproducción sexual de este grupo de hongos se compone de tres fases. En la primera ocurre la plasmogamia, dada por la unión de protoplastos por somatogamia, en la cual se origina un grupo de células binucleadas, a partir de las cuales se forma un micelio secundario dicariótico que culmina con el desarrollo total del basidiocarpo, lo que inicia la siguiente fase: la cariogamia (Alexopoulos et al., 1996; Kendrick, 2017). Esta segunda etapa ocurre en los basidios, cuyos núcleos se fusionan, convirtiéndose en células diploides. Luego, en la última fase, que corresponde a la meiosis, se reduce el número de cromosomas al estado haploide y se obtienen las esporas (Castro y Moreno, 2014).

Figura 18. Estructuras microscópicas de reproducción sexual de un agarical

Finalmente, se desarrollan de dos a cuatro basidiosporas, cada una dispuesta sobre una estructura alargada del basidio llamada esterigma (Webster y Weber, 2007) (Figura 18). La liberación de las basidiosporas sucede cuando alcanzan la madurez y son disparadas a gran velocidad por medio de un mecanismo de liberación activa conocido como descarga balistospórica, ocasionado por la gota de Buller (Horton, 2017; Lakkireddy y Kües, 2017).

La gota de Buller consiste en la formación de una pequeña gota de agua en el esterigma que, al entrar en contacto con la basidiospora, la expulsa con una aceleración superior a 25.000 g fuera del himenio (Money, 1998). Este proceso permite la liberación de un gran número de esporas en las corrientes de aire, lo cual es favorable para las estrategias reproductivas y la colonización de nuevos espacios, permitiéndoles una mayor distribución geográfica (Dam, 2013; Fischer et al., 2010; Lakkireddy y Kües, 2017).

Los hongos Agaricales cuentan con una amplia distribución geográfica y son de gran importancia debido a que presentan una extensa lista de características, funciones y aplicaciones que le dan gran valor investigativo y tecnológico a este conjunto de organismos. De este modo resultan provechosos para el hombre en varios campos de aplicación y bioprospección.

Por una parte, en el campo gastronómico, medicinal y farmacéutico, este orden se destaca por la contribución de gran cantidad de setas comestibles con un alto contenido proteico que no solo es aprovechado por la industria alimentaria, sino que actúa sobre infecciones y enfermedades de origen viral y bacteriano (Bolaños y Soto, 2011; Novaes et al., 2011; Singer, 1986; Velázquez et al., 2018). Incluso se encuentran especies de Agaricales con sustancias o compuestos psicoactivos y tóxicos, cuyo consumo es letal (Rzymski y Klimaszyk, 2018; Stamets, 1996; Vargas et al., 2011). Son precisamente estas peculiaridades las que les dan gran importancia a estos hongos desde la perspectiva social puesto que hacen parte de la tradición de algunas culturas al ser considerados como agentes psicoactivos (Burrola-Aguilar et al., 2012; Guzmán, 2016; Quevedo et al., 2018).

Por otra parte, en el sector agronómico y forestal, los Agaricales son ampliamente estudiados por su potencial como bioinoculantes o biofertilizantes del suelo y las plantas (Jiménez et al., 2013). Asimismo, en el campo ambiental son importantes por su potencial enzimático, siendo aprovechados en los procesos de biorremediación de suelos contaminados con compuestos xenobióticos (Clemmensen et al., 2013; Li et al., 2018; Sefidi y Etemad, 2015; Thakur, 2019). También aportan al mantenimiento, la conservación y la recuperación de ambientes protegidos y deteriorados como los bosques y plantaciones agrícolas y forestales (Van Der Heijden et al., 2006).

En cuanto a su función en la naturaleza, los macromicetos Agaricales cumplen diferentes roles ecológicos: participan en la degradación de la materia orgánica, regulando a su vez el flujo de nutrientes y favoreciendo a plantas y a ciertos grupos de microorganismos (Montoya et al., 2010); algunos macrohongos actúan como parásitos o agentes patógenos (Clemmensen et al., 2013; Moreno y Manjón, 2010), y otros forman asociaciones simbióticas con las plantas, conocidas como «ectomicorrizas» (Camargo-Ricalde et al., 2012; Harley y Smith, 1983) (Figura 19).

Figura 19. Asociación ectomicorrícica entre un agarical y una planta vascular

La importancia de los macromicetos Agaricales es indiscutible desde varios contextos. Sin embargo, en Colombia el estudio de estos organismos es escaso y está localizado en pocas áreas del país (Franco-Molano y Calle, 2000; Franco-Molano et al., 2010). El 99 % de los registros de macrohongos se han realizado principalmente en la región andina, en ecosistemas naturales andinos, bosques húmedos y secos (Vasco-Palacios y Franco-Molano, 2013), dejando por fuera ecosistemas de gran biodiversidad que presentan condiciones ideales para el desarrollo de cuerpos fructíferos (Montanez et al., 2016; Paz et al., 2015).

Actualmente, en Colombia se conocen 1.353 especies de macromicetos correspondientes al phylum Basidiomycota (Gómez-Montoya et al., 2022). De este total, 700 son del orden Agaricales, siendo el más numeroso de macrohongos para el país (Gómez-Montoya et al., 2022). Por otra parte, el departamento del Magdalena solo cuenta con dos estudios realizados sobre diversidad de estos organismos en la parte occidental de la Sierra Nevada de Santa Marta, que es el área con mayor abundancia en el número de estas especies en la costa Caribe (Franco-Molano et al., 2010; Vasco-Palacios y Franco-Molano, 2013). No obstante, tal como lo mencionan Gómez-Montoya et al. (2022), en la legislación colombiana, el Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible y la Autoridad Nacional de Licencias Ambientales (2018) no contemplan el registro de las especies de la funga, a pesar de la alta diversidad biológica de Colombia.

La información obtenida a partir de los trabajos de investigación sobre la taxonomía y la ecología de macromicetos en Colombia, sumada a las observaciones preliminares de abundantes cantidades de hongos del orden Agaricales en diferentes áreas del departamento del Magdalena, incluyendo el entorno natural del campus de la Universidad del Magdalena, motivó a los micólogos integrantes del grupo de investigación MIKU a formar el «Team Fungi», con el propósito de estudiar la diversidad de estos organismos en la región. De este modo fue posible formar un espacio para la investigación mediante el registro de especies y muestras que se conservan en la Colección Micológica del Centro de Colecciones Biológicas de la Universidad del Magdalena (CBUMAG) para las generaciones futuras que aspiren a realizar proyectos afines a los macrohongos.

Metodología

Área de estudio

La Universidad del Magdalena es una institución de educación superior que se ubica al noreste de Colombia, entre los 11°13’18,31” de latitud norte y los 74°11’08,80” de longitud oeste, en el área urbana de la ciudad de Santa Marta. Ocupa un área aproximada de 30 ha, las cuales se distribuyen en edificios de aulas de clase, oficinas por dependencias, escenarios deportivos y una granja experimental donde se encuentra una reserva de bosque seco tropical (Figura 20). Cuenta con un lago artificial, el cual cumple la función de hábitat para especies de aves, reptiles y peces. El sitio de estudio presenta un promedio anual de precipitación de 608,8 mm y consta de remanentes de vegetación nativa de bosque seco tropical.

Recolección y muestreo de hongos Agaricales

La recolección de los macrohongos se realizó mediante el método oportunista (Mueller y Bills, 2004; Mueller et al., 2004). Así, se establecieron cinco zonas dentro del campus que presentaban vegetación arbórea, arbustiva, jardines con plantas ornamentales, pastizales y plantas rastreras y plantaciones agrícolas (Figura 20):

•La zona 1 correspondió al área de la Granja Experimental y el sector de la reserva de bosque seco tropical «Leda Mendoza».

•La zona 2 se ubicó en los escenarios deportivos como estadios y sector del hemiciclo.

•La zona 3 se situó en el sector del lago, la Biblioteca Germán Bula Meyer, la cafetería central y el Bloque 8.

•La zona 4 fue establecida en los jardines de la entrada de la Universidad del Magdalena y del edificio administrativo.

•La zona 5 se estableció en el corredor de los edificios Sierra Nevada, Ciénaga Grande y Mar Caribe.

Figura 20. Campus de la Universidad del Magdalena en la ciudad de Santa Marta. Se observan las zonas de recolección de los macrohongos

Figura 21. Registro fotográfico y recolección de las muestras en las distintas zonas dentro del campus de la Universidad del Magdalena

Los muestreos se realizaron desde octubre de 2018 hasta octubre de 2019, teniendo en cuenta las temporadas de lluvias. Se recolectaron entre 2-7 basidiocarpos completos de cada ejemplar empleando una navaja. A todos los basidiomas se les tomó el registro fotográfico en su hábitat, y se detalló cada estructura de interés taxonómico.

Identificación taxonómica

La descripción de los basidiocarpos se realizó en fresco para aprovechar los caracteres de interés taxonómico que se pierden con la desecación y el transporte (Figura 21). Las características que se tuvieron en cuenta fueron las medidas de píleo y estípite, forma y ornamentación del píleo, disposición de las láminas, posición, forma y ornamentación del estípite, y estructuras ornamentales como escamas, estrías, escuámulas, verrugas, vellosidades, anillo y volva, de acuerdo con lo propuesto por Lodge et al. (2004). Para identificar los colores de cada parte del basidioma y de la esporada (Figura 22), se utilizó la cartilla de colores Methuen Handbook of Colour (Kornerup y Wanscher, 1978).

Las muestras se guardaron en recolectores plásticos con separadores y en bolsas de papel, según su consistencia, y se registraron los siguientes datos: fecha, zona, sustrato, hábito, número de recolección y recolector. Los ejemplares más robustos se emplearon para determinar la esporada (Figura 22), observando la coloración de las esporas y de las láminas con ayuda de una cartulina de colores blanco y negro. Los basidiocarpos se secaron en el laboratorio de microbiología utilizando una estufa con circulación de aire caliente entre 40-60 °C por 24 horas.

Figura 22. A. Observación de los caracteres de interés taxonómico en las muestras frescas de Agaricales en el Laboratorio del Grupo de Investigación MIKU; B. Esporada de un hongo Agarical, en este caso de Macrocybe sp.

El material recolectado fue revisado y analizado en el Laboratorio del Grupo de Investigación en Manejo y Conservación de Fauna, Flora y Ecosistemas Estratégicos Neotropicales (MIKU) y el Laboratorio de Calidad de Aire, en la Universidad del Magdalena, utilizando un estereoscopio Nikon y microscopio Zeiss Primo Star con cámara. Se realizaron preparaciones de láminas y cortes del píleo, y para la hidratación de estos últimos se empleó KOH al 5 %, alcohol al 70 % y agua. Para observar las estructuras microscópicas se usaron rojo congo y reactivo de Melzer. La descripción de las estructuras siguió las técnicas propuestas por Largent (1986), basándose en el tamaño, la forma y la ornamentación de las esporas; el tamaño, la forma y el número de esterigmas de los basidios; el tamaño, la forma y el tipo de cistidios, y el tamaño y el tipo de trama hifal. Las mediciones de las estructuras microscópicas se obtuvieron mediante el programa ToupView v. 3.7.

Los Agaricales se identificaron mediante claves taxonómicas especializadas de Singer (1986), Pegler (1983), Kuo (2007), Lazo (2001) y Petersen y Lassoe (2012). Asimismo, para corroborar algunas de las identificaciones, se contó con la colaboración del Dr. Ricardo Valenzuela Garza, curador de la Colección de Hongos del Instituto Politécnico Nacional (IPN) de México. Para la clasificación y las sinonimias de las especies se utilizó el portal virtual Index Fungorum.

Una vez las muestras fueron identificadas, se elaboró una base de datos en el programa Excel producto de suscripción Microsoft Office 365 ProPlus versión 1908. En ella se consignó la siguiente información: orden, familia, género, especie, sustrato, zona y fecha de colecta, para realizar los análisis de diversidad taxonómica. Los ejemplares recolectados forman parte de la Colección Micológica y se depositaron en el Centro de Colecciones Biológicas de la Universidad del Magdalena (CBUMAG).

A partir de las especies identificadas, se elaboraron 35 fichas taxonómicas. Cada una de ellas contiene la descripción minuciosa de las características macroscópicas y menciona algunos detalles microscópicos observados durante las fases de campo y de laboratorio, resaltando aquellos diagnósticos que facilitan el reconocimiento de cada taxón. Las descripciones se acompañan con fotografías del material fresco, que muestran las características macroscópicas y las láminas con detalles específicos de los caracteres microscópicos. Todas las láminas y las tablas fueron realizadas por los autores Alejandra Barrios y Cristian Abaunza. Además, en los casos en que los materiales fueron identificados hasta nivel específico, se entregan datos sobre la distribución y el hábitat.

Catálogo de macrohongos del orden Agaricales

Durante los muestreos realizados se recolectaron un total de 35 especímenes pertenecientes al orden Agaricales, distribuidos en cinco zonas del campus de la Universidad del Magdalena. De estos se lograron identificar 18 ejemplares hasta nivel específico, y los 17 restantes, hasta nivel genérico. Puntualmente, dentro de los Agaricales se determinaron seis familias: Agaricaceae, Marasmiaceae, Pluteaceae, Psathyrellaceae, Strophariaceae y Tricholomataceae. La primera, Agaricaceae, es la más diversa, con seis géneros, diez especies y ocho morfoespecies. Con relación a los géneros, se destacan Leucoagaricus (Agaricaceae) y Psathyrella (Psathyrellaceae), con seis especies.

Las especies identificadas se listan en la Tabla 1, donde están organizadas alfabéticamente según la familia, el género y la(s) especie(s). Además, figuran las 17 morfoespecies que, si bien no fue posible asignarles un epíteto especifico, se reconocen como un taxón claramente distinguible del resto. Con relación a la abundancia, los géneros Marasmius, Agrocybe y Psathyrella presentaron mayor número de individuos.

En cuanto a la preferencia del sustrato en el que se encontraron asociados los Agaricales del campus de la Universidad del Magdalena, la mayoría de las especies son terrícolas, que crecen sobre suelo desnudo, revestido con algún tipo de vegetación o cubierto de materia orgánica. Otro grupo fue clasificado como humícolas por encontrarse sobre la capa de materia orgánica de origen vegetal en degradación que se acumula sobre el suelo, compuesta por hojarasca foliar, restos de madera, pequeñas ramas de árboles o material reproductivo de plantas. Un menor grupo es el de los lignícolas, hallados sobre troncos en descomposición o en madera viva, creciendo sobre árboles.

Tabla 1. Clasificación taxonómica de las especies de macrohongos del orden Agaricales presentes en el campus de la Universidad del Magdalena

Orden | Familias | Géneros | Especies
Agaricales | Agaricaceae | Agaricus | Agaricus griseorimosus
Agaricus sp.1
Chlorophyllum | Chlorophyllum hortense
Chlorophyllum molybdites
Chlorophyllum sp.1
Lepiota | Lepiota sp.1
Lepiota sp.2
Leucoagaricus | Leucoagaricus lilaceus
Leucoagaricus roseilividus
Leucoagaricus rubrotinctus
Leucoagaricus sp.1
Leucoagaricus sp.2
Leucoagaricus sp.3
Leucocoprinus | Leucocoprinus birnbaumii
Leucocoprinus cepistipes
Leucocoprinus venezuelanus
Leucocoprinus sp.1
Podaxis | Podaxis pistillaris
Marasmiaceae | Marasmius | Marasmius haematocephalus
Marasmius sp.1
Pluteaceae | Volvariella | Volvariella cubensis
Volvariella sp.1
Pluteus | Pluteus petasatus
Psathyrellaceae | Psathyrella | Psathyrella vanhermanii
Psathyrella sp.1
Psathyrella sp.2
Psathyrella sp.3
Psathyrella sp.4
Psathyrella sp.5
Strophariaceae | Agrocybe | Agrocybe pediades
Agrocybe retigera
Agrocybe sp.1
Tricholomataceae | Macrocybe | Macrocybe titans
Incertae sedis | Cystodermella | Cystodermella sp.1
Panaeolus | Panaeolus sylvaticus

Entre las cinco zonas estudiadas dentro del campus, la zona 1, que corresponde al área de la Granja Experimental y de la reserva de bosque seco tropical «Leda Mendoza», es la que presenta mayor diversidad de Agaricales, con un registro de 16 especies de macrohongos, mientras que en las restantes cuatro zonas se hallaron menos de seis especies en cada una de ellas. La zona 4, en particular, que corresponde al sector más transitado del campus de la universidad —la entrada de la institución, las áreas de parqueadero y el edificio administrativo principal— es la más baja, con apenas tres especies. Además, cabe resaltar que cada especie que se recolectó en una de las zonas no se registró en las otras (Tabla 2).

Tabla 2. Especies de macrohongos Agaricales en las cinco zonas de recolección establecidas en el campus de la Universidad del Magdalena

Especie | Zona 1 | Zona 2 | Zona 3 | Zona 4 | Zona 5
1.Agaricus griseorimosus | X |  |  |  |
2.Agaricus sp.1 |  |  |  |  | X
3.Chlorophyllum hortense |  | X |  |  |
4.Chlorophyllum molybdites |  |  |  |  | X
5.Chlorophyllum sp.1 |  |  | X |  |
6.Lepiota sp.1 | X |  |  |  |
7.Lepiota sp.2 |  | X |  |  |
8.Leucoagaricus lilaceus | X |  |  |  |
9.Leucoagaricus roseilividus |  |  |  |  | X
10.Leucoagaricus rubrotinctus | X |  |  |  |
11.Leucoagaricus sp.1 | X |  |  |  |
12.Leucoagaricus sp.2 | X |  |  |  |
13.Leucoagaricus sp.3 |  |  | X |  |
14.Leucocoprinus birnbaumii | X |  |  |  |
15.Leucocoprinus cepistipes | X |  |  |  |
16.Leucocoprinus venezuelanus |  | X |  |  |
17.Leucocoprinus sp.1 | X |  |  |  |
18.Podaxis pistillaris |  |  |  |  | X
19.Marasmius haematocephalus | X |  |  |  |
20.Marasmius sp.1 | X |  |  |  |
21.Volvariella cubensis |  |  |  | X |
22.Volvariella sp.1 |  |  | X |  |
23.Pluteus petasatus | X |  |  |  |
24.Psathyrella vanhermanii | X |  |  |  |
25.Psathyrella sp.1 | X |  |  |  |
26.Psathyrella sp.2 | X |  |  |  |
27.Psathyrella sp.3 |  |  | X |  |
28.Psathyrella sp.4 | X |  |  |  |
29.Psathyrella sp.5 |  | X |  |  |
30.Agrocybe pediades |  |  |  |  | X
31.Agrocybe retigera |  |  |  | X |
32.Agrocybe sp.1 |  |  |  |  | X
33.Macrocybe titans |  |  |  | X |
34.Cystodermella sp.1 |  |  | X |  |
35.Panaeolus sylvaticus |  | X |  |  |
Total | 16 | 5 | 5 | 3 | 6

Es importante y muy necesario tener en cuenta que la mayoría de los macrohongos registrados en el campus de la Universidad del Magdalena no son comestibles, y tres de hecho son tóxicos (tabla 3). Solo una especie, Macrocybe titans (Tricholomataceae), puede consumirse. Como su nombre lo indica, esta última se distingue porque puede alcanzar grandes dimensiones con respecto al tamaño del basidioma, de forma que el píleo puede llegar a medir 45 cm (Pegler et al., 1998) y alcanzar hasta 100 cm de diámetro. Este hongo crece en suelos ricos en materia orgánica y forma colonias de 3-5 individuos. Según Calonge et al. (2007), tiene aroma agradable y buen sabor, lo que sugiere la posibilidad de cultivo a gran escala con vistas a la obtención de alimentos en regiones tropicales. Sin embargo, en Santa Marta no se considera este uso.

Las tres especies tóxicas —Chlorophyllum hortense, Chlorophyllum molybdites y Leucocoprinus birnbaumii— pertenecen a la familia Agaricaceae. Con las dos especies de Chlorophyllum hay que tener cuidado, debido a que su consumo provoca severas intoxicaciones, con graves trastornos digestivos como vómitos, diarrea, mareos, fotofobia, escalofríos y, en algunos casos, la muerte. Estos hongos son llamativos, pueden alcanzar gran tamaño, tienen un aroma agradable, su aspecto es similar a un champiñón gigante, y son muy frecuentes en parques y jardines. Leucocoprinus birnbaumii, por otra parte, es una seta tropical, de color amarillo sulfúreo brillante. Es ligeramente venenosa, por lo que no se recomienda el consumo, ya que produce molestias digestivas debido a que tiene alcaloides tóxicos que pueden provocar úlceras gástricas pépticas.

Por lo mencionado anteriormente, hay que ser precavidos y poner especial atención a las características morfológicas de las especies de Chlorophyllum y de Leucocoprinus para la correcta identificación de los cuerpos fructíferos y evitar su consumo.

Tabla 3. Listado de macrohongos del orden Agaricales en el campus de la Universidad del Magdalena según su uso o toxicidad

Agaricales comestibles, no comestibles y tóxicos
Comestibles | No comestibles | Tóxicos
Macrocybe titans | Agaricus griseorimosus | Chlorophyllum hortense
| Leucoagaricus lilaceus | Chlorophyllum molybdites
| Leucoagaricus roseilividus | Leucocoprinus birnbaumii
| Leucoagaricus rubrotinctus |
| Leucocoprinus cepistipes |
| Leucocoprinus venezuelanus |
| Podaxis pistillaris |
| Marasmius haematocephalus |
| Volvariella cubensis |
| Pluteus petasatus |
| Psathyrella vanhermanii |
| Agrocybe pediades |
| Agrocybe retigera |
| Panaeolus sylvaticus |

Fichas taxonómicas

Agaricaceae

Género Agaricus

1.Agaricus griseorimosus Pegler, Kew Bull., Addit. Ser. 9: 435 (1983) | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, solitario. Recolectado en la zona 1 rodeado de hojarasca, en un fragmento de bosque seco tropical, durante la temporada de lluvias, el 12 de octubre de 2018.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 005 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo carnoso, cónico a campanulado y plano en ejemplares maduros, de 60-70 mm de diámetro y color marrón grisáceo; con superficie lisa y suave; margen decurvado a recto y borde rimoso. Láminas de color marrón chocolate oscuro, libres, apretadas, con borde liso y lamélulas. Pie blanco amarillento, de 65-70 x 5-6 mm, central, cilíndrico, fibroso y hueco; con anillo subapical, blanco, doble y peronado ascendente (algunos ejemplares presentan estípite con tormento basal). Carne de color amarillo pálido y marrón oscuro, consistente y suave (Figura 23).

Figura 23. Basidiomas de Agaricus griseorimosus: A. Basidiocarpos enteros; B. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2021).

Detalles microscópicos. Basidiosporas de color marrón oscuro, de 4,04-5,46 x 2,62-3,88 µm, elipsoides y con pared gruesa. No se distingue poro germinativo. Queilocistidios hialinos y claviformes. Pileipellis compuesta por hifas hialinas, globosas y con paredes delgadas (Figura 24).

Figura 24. Estructuras microscópicas de Agaricus griseorimosus: A. Esporas; B. Queilocistidios; C. Hifas de la pileipellis. Escala: A = 10 μm; B = 20 μm; C = 20 μm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2021).

Distribución. En Colombia, ha sido registrado en Caquetá (Sánchez, 2003) y Magdalena (Luna-Fontalvo et al., 2021). También se ha hallado en isla Martinica, en las Antillas Menores (Angelini et al., 2018) y en India (Farook et al., 2013).

2.Agaricus sp.1 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, disperso. Recolectado en la zona 5 rodeado de hojarasca, durante la época de lluvias, el 1 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 042 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo convexo a plano, de 20-45 mm de diámetro de color blanco rosáceo; superficie húmeda, opaca, con pequeñas escamas centrales color marrón y ligeramente estriado hacia las orillas; margen decurvado a recto y borde entero. Láminas de color rojo pastel, libres, juntas-apretadas, de borde ondulado y con lamélulas. Pie blanco grisáceo, de 40-52 x 4-7 mm, central, cilíndrico, hueco, fibroso y con apariencia sedosa; con anillo apical, concoloro con el píleo, peronado, ascendente y frágil. Carne de color blanco, blanda y delgada (Figura 25).

Figura 25. Basidiomas de Agaricus sp.1: A. Píleo en ejemplares jóvenes; B. Detalles del píleo en ejemplares maduros; C. Detalles del himenio; D. Basidiocarpos. Escala: A = 3 cm; B = 2 cm; C = 3 cm; D = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas de 4,34-6,34 x 3,1-4,29 µm, elipsoides, lisas y con pared gruesa. No se distingue poro germinativo. Basidios hialinos, tetraspóricos, claviformes, con pared delgada y ápices redondeados (Figura 26).

Figura 26. Estructuras microscópicas de Agaricus sp.1: A. Esporas; B. Basidios. Escala A = 10 µm; B = 20 µm

Género Chlorophyllum

3.Chlorophyllum hortense (Murrill) Vellinga, Mycotaxon 83: 416 (2002) | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, disperso. Recolectado en la zona 2 rodeado de gramíneas, durante la época de lluvias, el 1 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 040 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo carnoso, convexo a plano y ligeramente umbonado, de 50-70 mm de diámetro, blanco con escamas de color marrón óxido; con superficie seca; margen recto a decurvado y borde desgarrado. Láminas blancas, libres, apretadas, con borde liso y lamélulas. Pie blanco con manchas de color naranja claro, de 70-90 x 4-6 mm, central, hueco, cilíndrico, fibroso; con anillo subapical, concoloro con el estípite, peronado y ascendente; base ligeramente ensanchada con cordones miceliales. Carne blanca, gruesa, abundante y consistente (Figura 27).

Figura 27. Basidiomas de Chlorophyllum hortense: A. Vista apical del píleo; B. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2021).

Detalles microscópicos. Basidiosporas de color verde grisáceo, de 7,13-9,28 x 5,28-7,32 µm, anchamente elipsoidales. No se distingue poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos y con relleno granular. Pleurocistidios ausentes. Queilocistidios con pigmentos vacuolares color amarillo verdoso, clavados (Figura 28).

Distribución. En Colombia, se encuentra en los departamentos del Magdalena (Luna-Fontalvo et al., 2021), Antioquia, Boyacá y Cundinamarca (Franco-Molano et al., 2010; Gómez-Montoya et al., 2022). También en Estados Unidos (Pegler, 1983) y Brasil (Alves et al., 2016).

Figura 28. Estructuras microscópicas de Chlorophyllum hortense: A. Esporas; B. Basidios; C. Queilocistidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2021).

4.Chlorophyllum molybdites (G. Mey.) Massee, Bull. Misceláneos Inf. Kew: 136 (1898) | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, gregario. Recolectado en la zona 5, sobre el suelo de zonas verdes y rodeado de pastos, durante la época seca, el 20 de agosto de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 024 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo carnoso, convexo a plano, de 80-120 mm de diámetro y de coloración gris amarillenta, con una amplia escama en el centro de color marrón coñac que se disgrega por toda la superficie; con margen decurvado y borde entero. Láminas de tonalidad verde grisácea, libres, densas, apretadas con borde liso y lamélulas. Pie de color marrón cocoa con zonas blanquecinas, de 180-200 x 10-12 mm, central, cilíndrico; con anillo doble, móvil, ascendente y concoloro con las escamas del píleo; base ligeramente ensanchada. Carne blanca, consistente, compacta y abundante (Figura 29).

Figura 29. Basidiomas de Chlorophyllum molybdites: A. Basidiocarpos inmaduros con hábito gregario; B. Vista apical del píleo; C. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas de color verde oliva, de 8,52-11,24 x 5,83-8,27 µm, elipsoides, con pared gruesa y poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos, con esterigmas (algunos exhiben relleno granular). Queilocistidios con pigmentos vacuolares marrón oliva, piriformes a claviformes (Figura 30).

Figura 30. Estructuras microscópicas de Chlorophyllum molybdites: A. Esporas; B. Basidios; C. Queilocistidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm

Distribución. En Colombia tiene amplia distribución: está presente en los departamentos de Antioquia, Magdalena, Meta, Nariño y Valle del Cauca (Barrios y Abaunza, 2020; Gómez-Montoya et al., 2022). También se encuentra en América del Norte (Estados Unidos, Canadá y México) y en el norte de América del Sur.

5.Chlorophyllum sp.1 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, usualmente gregario, a veces disperso. Recolectado en la zona 3, durante la época de lluvias, el 30 de septiembre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 037 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo convexo a plano, umbonado y carnoso; de 80-95 mm de diámetro; blanco con escamas de color naranja parduzco; con superficie seca, margen recto y borde desgarrado. Láminas de color blanco amarillento, que se oscurecen con la madurez; libres, apretadas, con borde liso y lamélulas. Pie blanco, de 60-70 x 8-12 mm, central, hueco, clavado; con anillo subapical, concoloro con el estípite, móvil, peronado y ascendente. Carne blanca, gruesa y consistente (Figura 31).

Figura 31. Basidiomas de Chlorophyllum sp.1: A. Basidiocarpos; B. Vista apical del píleo; C. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas de color verde grisáceo, de 8,79-10,82 x 6,77-8,54 µm, anchamente elipsoidales. No se distingue poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos, bispóricos, con relleno granular. Queilocistidios hialinos, claviformes a lageniformes. Pleurocistidios ausentes (Figura 32).

Figura 32. Estructuras microscópicas de Chlorophyllum sp.1: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm

Género Lepiota

6.Lepiota sp.1 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, solitario. Recolectado en la zona 1, en un fragmento de bosque seco tropical, durante la época de lluvias, el 11 de octubre del 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 051 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo plano y umbonado, de 27-35 mm de diámetro; blanco con escamas en el centro, de color marrón rojizo; con superficie seca, margen recto y borde crenado. Láminas blancas, libres, apretadas y con lamélulas. Pie de color blanco amarillento, de 60-90 x 3-5 mm, central, hueco, cilíndrico, flexuoso y fibroso; con anillo subapical, membranoso, peronado ascendente y con borde crenado. Carne blanca, delgada y frágil (Figura 33).

Figura 33. Basidiomas de Lepiota sp.1: A. Vista lateral del píleo; B. Detalles del himenio; C. Detalles del estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 4 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas de 5,11-6,49 x 3,18-4,54 µm, elipsoides, con pared gruesa y lisa. No se distingue poro germinativo. Basidios hialinos, clavados y tetraspóricos. Queilocistidios y pleurocistidios no observados (Figura 34).

Figura 34. Estructuras microscópicas de Lepiota sp.1: A. Esporas; B. Basidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm

7.Lepiota sp.2 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, disperso, a veces cespitoso. Recolectado en la zona 2, durante la época de lluvia, el 1 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 047 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo pulviniforme-convexo, de 24,2-26,3 mm de diámetro y color blanco; superficie fibrilosa, con escamas color naranja pardusco y ligeramente estriada; margen incurvado-decurvado y borde entero. Láminas blancas, libres, juntas, con borde liso y lamélulas. Pie concoloro con el píleo, de 42-43,2 x 5-7 mm, central, cilíndrico, con anillo peronado, ascendente. Carne blanca, delgada y blanda (especialmente en el píleo) (Figura 35).

Figura 35. Basidiomas de Lepiota sp.2: A. Basidiocarpos; B. Detalles del píleo; C. Detalles del estípite. Escala: A = 2 cm; B = 1 cm; C = 1 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, elipsoides, de pared gruesa y sin poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, con ápices globosos o redondeados, capitados (algunos exhiben contenido granular). Pleurocistidios y queilocistidios no observados (Figura 36).

Figura 36. Estructuras microscópicas de Lepiota sp.2: A. Esporas; B. Basidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm

Género Leucoagaricus

8.Leucoagaricus lilaceus Singer, in Singer & Digilio, Lilloa 25: 274 (1952) [1951] | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, solitario, a veces disperso. Recolectado en la zona 1, en un fragmento de bosque seco tropical, durante la época de lluvias, el 13 de octubre de 2018.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 002 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo carnoso, convexo a plano, de 50-70 mm de diámetro y color blanco, con una amplia escama rubí grisáceo a rubí oscuro, que se disgrega por todo el sombrero; superficie seca, con margen recto, borde rimoso y a veces lobulado. Láminas blancas amarillentas, libres, apretadas, ventricosas, con borde liso y lamélulas. Pie de color blanco en el ápice y castaño claro en la base, de 50-60 x 6-8 mm, central, con anillo fugaz y ausente en basidiomas maduros; base engrosada, con un bulbo prominente y redondeado. Carne blanca y consistente (Figura 37).

Figura 37. Basidiomas de Leucoagaricus lilaceus: A. Vista apical del píleo; B. Vista lateral del basidiocarpo; C. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 2 cm; B = 4 cm; C = 2 cm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2021).

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, elipsoides y con pared gruesa. No se distingue poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos. Pleurocistidios ausentes y queilocistidios no observados. Pileipellis compuesta por hifas postradas (Figura 38).

Distribución. Se registró por primera vez para Colombia por Luna-Fontalvo et al. (2021) en el departamento del Magdalena. Habita en Argentina (Singer y Digilio, 1951), Brasil (Ferreira y Cortez, 2012), Paraguay (Flecha-Rivas et al., 2013) y México (De la Fuente et al., 2018).

Figura 38. Estructuras microscópicas de Leucoagaricus lilaceus: A. Esporas; B. Basidios; C. Hifas de la pileipellis. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2021).

9.Leucoagaricus roseilividus (Murrill) E. Ludw., Pilzkompendium (Eching) 3: 509 (2012) | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, solitario. Recolectado en la zona 5, rodeado de pastos, durante la época de lluvias, el 11 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 050 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo convexo a planoconvexo, de 42,6-63,9 mm de diámetro, blanco con escamas sobre toda la superficie de color magenta grisáceo, más oscuro hacia el centro; margen decurvado y borde entero. Láminas de color blanco anaranjado, libres, apretadas, con borde liso y lamélulas. Pie concoloro con el píleo más oscuro hacia la base, de 53,22-55,8 x 4-7 mm, central, clavado y fibriloso; con anillo súpero, de color blanco por encima y magenta grisáceo por debajo. Carne blanca y consistente (Figura 39).

Figura 39. Basidiomas de Leucoagaricus roseilividus: A. Basidiocarpo; B. Vista apical del píleo; C. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 3 cm; B = 2 cm; C = 2 cm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2021).

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, elipsoides, con pared gruesa y poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos, con paredes lisas y delgadas (algunos exhiben contenido granular). Queilocistidios polimórficos, claviformes, utriformes, cilíndricos ondulados, oblongos, ligeramente ventricosos, con paredes engrosadas; se muestran hialinos a amarillentos en KOH, y exhiben pigmentos vacuolares de color marrón oliva (Figura 40).

Figura 40. Estructuras microscópicas de Leucoagaricus roseilividus: A. Esporas; B. Basidios; C. Queilocistidios; D. Hifas de la pileipellis. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm; D = 20 µm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2021).

Distribución. En Colombia, se ha registrado en el departamento del Magdalena (Luna-Fontalvo et al., 2021). Adicionalmente, está presente en California, Estados Unidos (Vellinga, 2006), y Brasil (Cabrera, 2015).

10.Leucoagaricus rubrotinctus (Peck) Singer, Sydowia 2(1-6): 36 (1948) | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, solitario. Recolectado en la zona 1, rodeado de hojarasca, en un fragmento de bosque seco tropical, durante la época seca, el 12 de junio de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 014 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo plano a cóncavo; de 15-20 mm de diámetro; blanco con una cubierta de diminutas escamas de color rojo, dispuestas radialmente, más oscuras en el centro que en las orillas; superficie seca y áspera; con borde entero y margen recto. Láminas blancas, libres, gruesas, apretadas y con lamélulas. Pie de 18-20 x 2-4 mm, blanco, cilíndrico, liso, central, fibroso, con anillo central y peronado ascendente; base con menudas escamas de color rojo. Carne blanca y consistente (Figura 41).

Figura 41. Basidiomas de Leucoagaricus rubrotinctus: A. Vista lateral del píleo; B. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 1 cm; B = 2 cm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2021).

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, elipsoides y con pared gruesa. No se distingue poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes y tetraspóricos. Queilocistidios hialinos, polimórficos, fusiformes-lageniformes, ventricosos, subcapitados. Pileipellis compuesta de hifas periclinales a hifas irregularmente ascendentes, con pigmentos vacuolares de color marrón oliva (Figura 42).

Figura 42. Estructuras microscópicas de Leucoagaricus rubrotinctus: A. Esporas; B. Basidios; C. Queilocistidios; D. Hifas de la pileipellis. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm; D = 20 µm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2021).

Distribución. Se encuentra en los departamentos de Magdalena (Luna-Fontalvo et al., 2021), Antioquia, Quindío (Franco-Molano et al., 2010), Cauca y Tolima (Gómez-Montoya et al., 2022). También está presente en Bolivia (Melgarejo-Estrada et al., 2020), Brasil (Ferreira y Cortez, 2012) y México (Terríquez-Villanueva et al., 2017).

11.Leucoagaricus sp.1 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, solitario, a veces disperso. Recolectado en la zona 1, rodeado de hojarasca, en un fragmento de bosque seco tropical durante la época seca, el 12 de junio de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31" N 74°11’08,80" W, JLF, CAS y ABY 016 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo convexo a plano, de 45-50 mm de diámetro; blanco amarillento, con manchas de color castaño; superficie lisa, margen recto y borde rimoso. Láminas amarillo pálido, libres, apretadas, con borde liso y lamélulas. Pie de color marrón grisáceo, con el ápice y la base más claros, de 55-60 x 4-5 mm, central, cilíndrico, liso y fibroso; con anillo subapical, móvil y delgado; base bulbosa, piriforme y rizomorfa. Carne blanca, delgada, suave, consistente, que se tiñe de rojo sangre al ser manipulada. Olor y sabor no examinados (Figura 43).

Figura 43. Basidiomas de Leucoagaricus sp.1: A. Detalles del píleo; B. Detalles del himenio y ápice del estípite; C. Base del estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, elipsoides, de pared gruesa. No se distingue poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos. Pleurocistidios no observados. Pileipellis compuesta de una maraña de hifas hialinas, que ascienden irregularmente y terminan en estructuras fusiformes, con ápices granulosos (Figura 44).

Figura 44. Estructuras microscópicas de Leucoagaricus sp.1: A. Esporas; B. Basidios; C. Elementos de la pileipellis. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm

12.Leucoagaricus sp.2 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, solitario. Recolectado en la zona 1, en un fragmento de bosque seco tropical durante la época de lluvias, el 20 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 025 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo convexo a plano, en algunos ejemplares umbonado, de 50-70 mm de diámetro, de color rojo apagado; superficie seca y lisa; borde entero y ligeramente enrollado hacia el interior; margen decurvado. Láminas de color blanco amarillento, libres, apretadas y con borde liso. Pie concoloro con el píleo, con la base ligeramente blanquecina, de 60-80 x 8-10 mm, con anillo intermedio, membranoso y ascendente. Carne suave, blanda y seca. Olor y sabor no examinados (Figura 45).

Figura 45. Basidiomas de Leucoagaricus sp.2: A. Vista lateral del píleo; B. Detalles del himenio; C. Detalles del estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, elipsoides, lisas y con pared gruesa. No se distingue poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes con ápices redondeados, tetraspóricos. Queilocistidios hialinos, de ventricosos a clavados (Figura 46).

Figura 46. Estructuras microscópicas de Leucoagaricus sp.2: A. Esporas; B. Basidios; C. Queilocistidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm

13.Leucoagaricus sp.3 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, disperso. Recolectado en la zona 3, rodeado de pastos durante la época lluviosa, el 1 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 035 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo levemente aplanado, de 40-45 mm de diámero, blanco con escamas de color marrón oscuro que se dispersan en fibrillas radiales de tonalidad marrón amarillento; superficie ligeramente estriada hacia las orillas; margen levantado y borde desgarrado. Láminas blancas, libres, anchas, apretadas, con borde liso y lamélulas. Pie concoloro con el himenio, de 40-60 x 3-4 mm, central, cilíndrico, y liso; con anillo intermedio, blanco y en forma de banda; base de color gris anaranjado y ligeramente ensanchada. Carne blanca y delgada (Figura 47).

Figura 47. Basidiomas de Leucoagaricus sp.3: A. Vista apical del píleo; B. Detalles del himenio y estípite. Escala A = 2 cm; B = 4 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, elipsoides, lisas, con pared gruesa y poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos y con relleno granular (Figura 48).

Figura 48. Estructuras microscópicas de Leucoagaricus sp.3: A. Esporas; B. Basidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm

Género Leucocoprinus

14.Leucocoprinus birnbaumii (Corda) Singer, Sydowia 15 (1-6): 67 (1962) [1961] | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo lignícola, solitario, usualmente gregario. Recolectado en la zona 1, sobre un tronco en descomposición, en un fragmento de bosque seco tropical durante la época de lluvias, el 20 de octubre de 2018.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 061 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo campanulado a plano, cónico en ejemplares jóvenes, de 20-40 mm de diámetro; de color amarillo; superficie estriada con escamas algodonosas; margen incurvado y borde desgarrado. Láminas concoloras con el píleo y el estípite; libres, apretadas y con borde liso. Pie de 50-70 x 5-8 mm, cilíndrico, liso, sólido en ejemplares jóvenes, hueco en maduros; con anillo membranoso, peronado, ascendente y fugaz; base clavada y escamosa. Carne amarillenta, delgada y frágil (Figura 49).

Figura 49. Basidiomas de Leucocoprinus birnbaumii: A. Basidiocarpo; B. Detalles del píleo; C. Detalles del himenio. Escala: A = 4 cm; B = 2 cm; C = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, globosas, lisas, con paredes gruesas y poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, bispóricos, tetraspóricos. Queilocistidios hialinos, polimórficos, fusiformes, ventricosos, cilíndricos a flexuosos. Pleurocistidios no observados (Figura 50).

Figura 50. Estructuras microscópicas de Leucocoprinus birnbaumii: A. Esporas; B. Basidios; C. Queilocistidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm

Distribución. En Colombia es común, conocido con el nombre de «hongo de maceta». Está presente en los departamentos del Amazonas, Antioquia, Cesar, Magdalena y Vichada (Gómez-Montoya et al., 2022) y Caldas (Vasco-Palacios y Franco-Molano, 2013).

15.Leucocoprinus cepistipes (Sowerby) Pat. [como «cepaestipes»], J. Bot. París 3: 336 (1889) | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, disperso. Recolectado en la zona 1, rodeado de hojarasca, en un fragmento de bosque seco tropical, durante la época seca, el 12 de junio de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 013 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo convexo a plano, levemente deprimido en ejemplares maduros, de 20-30 mm de diámetro; blanco, en algunos ejemplares con una escama redonda en el centro, de color amarillo maíz; superficie flocosa y estriada hacia al margen; borde entero, margen recto a levantado. Láminas blancas, libres, apretadas, con borde liso y lamélulas. Pie concoloro con el himenio, de 40-50 x 3-4 mm, flocoso; con anillo fugaz, intermedio, membranoso, peronado, ascendente y con borde crenado. Carne blanca, blanda y pegajosa (Figura 51).

Figura 51. Basidiomas de Leucocoprinus cepistipes: A. Vista lateral del píleo; B. Detalles del himenio; C. Detalles del estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 2 cm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2021).

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, elipsoides, lisas, con pared gruesa y poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos, con pared fina, carecen de pinza basal. Pleurocistidios no observados. Queilocistidios hialinos, con pared lisa y delgada, polimórficos, clavados, ventricosos, fusiformes, lageniformes y algunos rostrados (Figura 52).

Figura 52. Estructuras microscópicas de Leucocoprinus cepistipes: A. Esporas; B. Basidios; C. Queilocistidios. Escala: A = 10 µm; B = 10 µm; C = 20 µm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2021).

Distribución. Se encuentra en Antioquia y Meta (Franco-Molano et al., 2000, 2010; Gómez-Montoya et al., 2022) y recientemente en el Caribe colombiano, en el departamento del Magdalena (Luna-Fontalvo et al., 2021). Esta especie tiene distribución pantropical. En América está en México (De la Fuente et al., 2018; Guzmán, 1983), las Antillas Menores, Martinica, Dominica, Antigua, Trinidad, Jamaica y las Bahamas (Pegler, 1983), Argentina y Paraguay (Campi et al., 2015) y Brasil (Rother y Da Silveira, 2009).

16. Leucocoprinus venezuelanus Dennis, Kew Bull. 15 (1): 109 (1961) | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, disperso y gregario. Recolectado en la zona 2, rodeado de hojarasca, durante la época de lluvias, el 1 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 041 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo convexo a plano, de 40-50 mm de diámetro; blanco con escamas de color coñac, disgregadas de forma radial hacia las orillas; superficie traslúcida estriada, con margen recto, levantado en los ejemplares maduros y borde desgarrado. Láminas blancas, libres, apretadas, con borde ligeramente crenado y lamélulas. Pie concoloro con el himenio, de 52-60 x 5-6 mm, central, hueco y clavado; con anillo intermedio, blanco y con diminutas escamas de color coñac adheridas al margen. Carne blanca y delgada (Figura 53).

Figura 53. Basidiomas de Leucocoprinus venezuelanus: A. Escamas del píleo; B. Vista apical del píleo; C. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 2 cm

Fuente: Luna et al. (2021).

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, elipsoides y lisas. No se distingue poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos y con relleno granular. Queilocistidios hialinos, fusiformes a claviformes. Pleurocistidios no observados (Figura 54).

Figura 54. Estructuras microscópicas de Leucocoprinus venezuelanus: A. Esporas; B. Basidios; C. Queilocistidios. Escala: A = 10 µm; B = 10 µm; C = 20 µm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2021).

Distribución. Se encuentra en los departamentos del Magdalena (Luna-Fontalvo et al., 2021) y Caquetá (Sánchez, 2003). También en Venezuela (Dennis, 1961), las Antillas Menores (Pegler, 1983) y Brasil (Karstedt y Stürmer, 2008).

17.Leucocoprinus sp.1 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, disperso. Recolectado en la zona 1, rodeado de hojarasca, en un fragmento de bosque seco tropical durante la época seca, el 12 de junio de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 015 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo plano a ligeramente cóncavo, de 20-30 mm de diámetro; blanco con pequeñas escamas de color castaño, disgregadas radialmente desde el centro del disco; superficie flocosa, estriada en las orillas, borde desgarrado y margen recto. Láminas blancas, libres, con borde crenado y lamélulas. Pie concoloro con el himenio, de 45-50 x 2-3 mm, central, clavado, en algunos ejemplares con apariencia grumosa; con anillo subapical, blanco, peronado, ascendente y frágil. Carne blanca y blanda (Figura 55).

Figura 55. Basidiomas de Leucocoprinus sp.1: A. Vista apical del píleo; B. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, elipsoides, lisas y con pared gruesa. No se distingue poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos y con relleno granular (Figura 56).

Figura 56. Estructuras microscópicas de Leucocoprinus sp.1: A. Esporas; B. Basidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm

Género Podaxis

18.Podaxis pistillaris (L.) Fr. [como «Podaxon»], Syst. mycol. (Lundae) 3 (1): 63 (1829) | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, solitario. Recolectado en la zona 5, durante la temporada de lluvias, el 1 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 043 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo elipsoide a obtusamente cónico, de 90-100 x 30-48 mm, de color blanco anaranjado con manchas marrón grisáceo; superficie seca, escamosa, quebradiza y brillante; borde del píleo adherido al estípite. Láminas ausentes; presenta tejido en polvo marrón oscuro a negro debido a las esporas. Pie marrón oscuro, de 70-100 mm x 10-13 mm, cilíndrico, fibroso, escamoso, con consistencia dura y engrosada en la parte basal (Figura 57).

Figura 57. Basidioma de Podaxis pistillaris: A. Cuerpo fructífero. Escala: A = 4 cm

Fuente: Barrios y Abaunza (2020).

Detalles microscópicos. Basidiosporas marrón oscuro, subglobosas, lisas y de pared gruesa, presentan poro germinativo (Figura 58).

Figura 58. Estructuras microscópicas de Podaxis pistillaris: A. Esporas. Escala: A = 10 µm

Distribución. Es frecuente en el Caribe colombiano. Se distribuye en los departamentos de La Guajira (Villalobos et al., 2017) y Magdalena (Barrios y Abaunza, 2020). Además, en América se ha registrado en Argentina y Brasil (Wright y Albertó, 2002), y en México y Estados Unidos (Watling y Gregory, 1977).

Marasmiaceae

Género Marasmius

19.Marasmius haematocephalus (Mont.) Fr., Epicr. syst. mycol. (Upsaliae): 382 (1838) [1836-1838] | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo humícola, disperso o gregario. Recolectado en la zona 1, en un fragmento de bosque seco tropical, durante la temporada lluviosa, el día 11 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 058 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo convexo a campanulado, de 7-12 mm de diámetro, de color magenta grisáceo a lila rojizo; superficie seca, opaca, pruinosa, surcada y con una depresión central marrón rojizo; margen decurvado y borde ondulado. Láminas color blanco rosáceo, anexas y separadas. Pie marrón rojizo, con un ápice concoloro con el himenio, de 20-40 x 0,5-1 mm, central, hueco, cilíndrico y glabro. Carne muy escasa, delgada y frágil (Figura 59).

Figura 59. Basidiomas de Marasmius haematocephalus: A. Vista apical del píleo; B. Vista lateral de basidiocarpos; C. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 1 cm; B = 1 cm; C = 1 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, baciliformes a clavadas y con pared delgada. Queilocistidios hialinos, cilíndricos a clavados con ápices aciculares. Pleurocistidios hialinos, clavados a fusiformes con ápices capitados a lanceolados y pared delgada. Pileipellis compuesta por elementos similares a los queilocistidios (Figura 60).

Figura 60. Estructuras microscópicas de Marasmius haematocephalus: A. Esporas; B. Queilocistidios; C. Pleurocistidios; D. Elementos de la pileipellis. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm; D = 20 µm

Distribución. Tiene amplia distribución. En Colombia, está presente en los departamentos del Magdalena (Barrios y Abaunza, 2020), Antioquia, Chocó, Caquetá, Sucre y Valle del Cauca (Gómez-Montoya et al., 2022). En Sudamérica, se ha registrado en Brasil (Puccinelli y Capelari, 2009) y en Argentina y Paraguay (Singer, 1965).

20.Marasmius sp.1 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo lignícola, con hábito disperso a gregario. Recolectado en la zona 1, en un fragmento de bosque seco tropical, en época lluviosa el día 11 de octubre del 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 057 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo cónico a convexo con apariencia de sombrilla, de 7-15 mm de diámetro, de color gris anaranjado; superficie surcada y traslúcida, con depresión central color marrón; margen recto con borde ondulado. Láminas concoloras con el píleo, anexas y separadas. Pie de color marrón, que tiende a negro hacia la base y se aclara hacia el ápice, hasta tornarse concoloro con el himenio, de 20-30 x 1-2 mm, central, cilíndrico y hueco. Carne muy escasa, delgada y frágil (Figura 61).

Figura 61. Basidiomas de Marasmius sp.1: A. Vista apical del píleo; B. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 1 cm; B = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, baciliforme a clavadas. Queilocistidios cilíndricos a clavados con ápices aciculares. Pileipellis con las mismas formas de los queilocistidios (Figura 62).

Figura 62. Estructuras microscópicas de Marasmius sp.1: A. Esporas; B. Queilocistidios; C. Pileipellis. Escala: A = 20 µm; B = 20 µm; C = 20 µm

Pluteaceae

Género Volvariella

21.Volvariella cubensis (Murrill) Shaffer, Mycologia 49 (4): 564 (1957) | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, solitario. Recolectado en la zona 4, creciendo entre pastos, en época de lluvias menores, el 16 de mayo de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 009 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo cónico-convexo, en algunos casos umbonado, de 40-50 mm de diámetro, de color gris parduzco con reflejos blanco anaranjado; superficie fibrilosa; margen decurvado y borde entero. Láminas de color rosado pálido, libres, anchas, apretadas y abundantes. Pie blanco amarillento, de 60-70 x 5-7 mm, central, cilíndrico, hueco, superficie lisa y sin anillo; presenta volva de color gris parduzco, prominente, ocreada, con descamación externa. Carne blanco-amarillenta, suave en el píleo y compacta en el estípite; olor y sabor no examinados (Figura 63).

Figura 63. Basidiomas de Volvariella cubensis: A. Vista apical del píleo; B. Vista lateral del basidiocarpo; C. Detalles del himenio y el estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 3 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, elipsoidales, de pared gruesa y con poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos, presentan contenido granular. Queilocistidios hialinos, polimórficos, fusiformes, lageniformes y rostrados. Pleurocistidios fusiformes-lageniformes con ápices moniliformes, hialinos. Pileipellis compuesta de hifas periclinales hialinas, septadas, sin pinza basal (Figura 64).

Figura 64. Estructuras microscópicas de Volvariella cubensis: A. Esporas; B. Basidios; C. Pleurocistidios; D. Queilocistidios; E. Hifas de la pileipellis. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm; D = 20 µm; E = 20 µm

Distribución. Ha sido registrada recientemente en el departamento del Magdalena (Barrios y Abaunza, 2020). Por primera vez se describió en Cuba (Murrill, 1911). También está presente en Guadalupe, las Antillas (Pegler, 1983), México (Hernández-Del Valle et al., 2019) y Brasil (Wartchow, 2009).

22.Volvariella sp.1 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo lignícola, con hábito de crecimiento disperso y gregario. Recolectado en la zona 3, en época seca, el 2 de julio de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 019 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo campanulado a convexo-umbonado blanco, de 60-75 mm de diámetro, de color blanco grisáceo; superficie seca y fibrilosa; margen incurvado con borde crenado-desgarrado. Láminas naranjas pálido, libres, apretadas y con lamélulas. Pie blanco, de 70-80 x 10-12 mm, central, hueco, cilíndrico y superficie sedosa; con volva ocreada de color blanco grisáceo. Carne blanca y consistente (Figura 65).

Figura 65. Basidioma de Volvariella sp.1: A. Píleo; B. Detalles del himeneo; C. Detalles de la volva. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 3 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, elipsoides. No se distingue poro germinativo. Basidios claviformes, tetraspóricos, exhiben contenido granular. Queilocistidios hialinos, lageniformes. Pleurocistidios hialinos, utriformes a lageniformes (Figura 66).

Figura 66. Estructuras microscópicas de Volvariella sp.1: A. Esporas; B. Basidios; C. Pleurocistidios; D. Queilocistidio. Escala A = 10 µm; B = 20 µm; C= 20 µm; D = 20 µm

Género Pluteus

23.Pluteus petasatus (Fr.) Gillet, Hyménomycètes (Alençon): 395 (1876) [1878] | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo lignícola, disperso. Recolectado en la zona 1, en un fragmento de bosque seco tropical, durante la temporada de lluvias, el 24 de septiembre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 030 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo plano y ligeramente umbonado, de 50-70 mm de diámetro, de color blanco grisáceo a naranja pálido; superficie fibrilosa, con mancha central marrón; margen recto con borde crenulado. Láminas de color naranja pálido, libres, apretadas, con borde liso y lamélulas. Pie blanco anaranjado, de 60-100 x 6-10 mm, central, cilíndrico a ligeramente clavado y fibroso. Carne color blanco anaranjado, gruesa y consistente. Esporada de color rojo pálido (Figura 67).

Figura 67. Basidiomas de Pluteus petasatus: A. Vista apical del píleo; B. Detalles del himenio; C. Basidiocarpos. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, elipsoidales, con pared delgada. No se distingue poro germinativo. Basidios claviformes, tetraspóricos con pared lisa y delgada. Pleurocistidios hialinos, metuloides a fusiformes y ápice con cuernos. Queilocistidios no observados (Figura 68).

Figura 68. Estructuras microscópicas de Pluteus petasatus: A. Esporas; B. Basidios; C. Pleurocistidios. Escala A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm

Distribución. Esta especie está presente en Colombia (Barrios y Abaunza (2020) y ha sido registrada en el departamento del Magdalena recientemente. También en México y Estados Unidos (Rodríguez y Guzmán-Davalos, 2001).

Psathyrellaceae

Género Psathyrella

24.Psathyrella vanhermanii A.H. Sm., Mem. Bot de Nueva York. Gdn 24: 79 (1972) | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, gregario. Recolectado en la zona 1, en un fragmento de bosque seco tropical, durante la época seca, el 12 de junio de 2019. Se encontró cerca de las raíces del orejero Enterolobium cyclocarpum (Fabaceae).

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 011 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo campanulado a plano, de 20-30 mm de diámetro; de color amarillo grisáceo, con una mancha marrón claro y diminutas escamas blancas en el centro del disco; con superficie seca y lisa; margen decurvado y borde rimoso. Láminas de color marrón oscuro, adheridas al estípite, apretadas, con borde liso y lamélulas. Pie blanco, de 35-45 x 4-5 mm, central, hueco, cilíndrico, flexuoso; con anillo intermedio, concoloro con el estípite, persistente, membranoso y peronado ascendente. Carne blanquecina, consistente y suave. Olor y sabor no examinados (Figura 69).

Figura 69. Basidiomas de Psathyrella vanhermanii: A. Basidiocarpos cespitados; B. Detalles del himenio y estípite; C. Detalles del píleo; D. Ejemplares con hábito gregario. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas de color marrón amarillento, elipsoides, otras cilíndricas, lisas, truncadas y con poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos, con ápices globosos o redondeados (en algunos se observa pinza basal). Queilocistidios hialinos, fusiformes a lageniformes, ventricosos, globosos. Pileipellis compuesta por células globosas a piriformes con paredes delgadas (Figura 70).

Figura 70. Estructuras microscópicas de Psathyrella vanhermanii: A. Esporas; B. Basidios; C. Queilocistidios D. Elementos de la pileipellis. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm; D = 20 µm

Distribución. Está presente en Colombia. Fue registrada por primera vez por Barrios y Abaunza (2020), en la llanura del Caribe, departamento del Magdalena.

25.Psathyrella sp.1 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo humícola, con hábito de crecimiento disperso. Recolectado en la zona 1, en un fragmento de bosque seco tropical, durante la época seca, el 12 de junio de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 012 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo convexo, en algunos ejemplares cuspidado o mamilado, de 20-30 mm de diámetro; de color blanco amarillento con una leve mancha amarilla en el centro; con margen decurvado y borde entero. Superficie seca, lisa en el centro y estriada en las orillas. Láminas de color naranja parduzco, agudas, adheridas al estípite, apretadas, de borde ondulado, y con lamélulas. Pie blanco y sedoso, de 45-50 x 2-3 mm, central, filiforme, fibroso, hueco, frágil. Carne blanca, delgada, blanda y frágil (Figura 71).

Figura 71. Basidiomas de Psathyrella sp.1: A. Vista lateral del píleo; B. Himenio y estípite; C. Basidiocarpos. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, oblongas, truncadas, con poro germinativo y contenido celular granuloso. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos, con relleno granular. Queilocistidios hialinos, polimórficos, fusiformes a lageniformes, ventricosos (Figura 72).

Figura 72. Estructuras microscópicas de Psathyrella sp.1: A. Esporas; B. Basidios; C. Queilocistidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 cm; C = 20 µm

26.Psathyrella sp.2 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo humícola, gregario. Recolectado en la zona 1, en un fragmento de bosque seco tropical, durante la época seca, el 20 de agosto de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS Y ABY 023 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo cónico a plano, de 30-40 mm de diámetro; de color naranja grisáceo, con una mancha amarillo rojizo en el centro del disco; superficie seca y delicadamente estriada; borde entero (a veces lacerado) y margen recto. Pie blanco y sedoso, de 60-80 x 2-3 mm; central, delgado, hueco, fibroso, frágil. Láminas de color champaña, adheridas al estípite, distantes, con borde ligeramente ondulado y lamélulas. Carne delgada, blanda y frágil (Figura 73).

Figura 73. Basidiomas de Psathyrella sp.2: A. Vista apical del píleo; B. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas de color marrón oscuro, oblongas, truncadas y con pared gruesa y poro germinativo. Queilocistidios hialinos, fusiformes a cilíndricos, ventricosos a clavados. Basidios y pleurocistidios no observados (Figura 74).

Figura 74. Estructuras microscópicas de Psathyrella sp.2: A. Esporas; B. Queilocistidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm

27.Psathyrella sp.3 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, gregario. Recolectado en la zona 3, creciendo entre hojarasca y rodeando las raíces de una fabácea, E. cyclocarpum, durante la época de lluvias, el 24 de septiembre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 033 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo plano, de 30-40 mm de diámetro; de color gris cenizo, con el centro amarillo pastel, rodeado de pequeñas manchas de color marrón grisáceo oscuro; con margen recto y borde rimoso. Láminas de color marrón chocolate, con algunas zonas blanquecinas, y en algunos ejemplares con los extremos teñidos de un tono grisáceo similar al del píleo; densas, apretadas, adheridas al estípite, adnatas, con borde liso a ligeramente ondulado y lamélulas. Pie blanco, de 50-70 x 2-3 mm, central, cilíndrico; con anillo fugaz, intermedio, concoloro con el estípite, peronado y ascendente. Carne delgada, blanda y frágil (especialmente en el píleo) (Figura 75).

Figura 75. Basidiomas de Psathyrella sp.3: A. Vista apical del píleo; B. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas de color marrón oscuro, elipsoides, truncadas, con pared gruesa y poro germinativo. Queilocistidios hialinos, claviformes, ventricosos a clavados, fusiformes, piriformes, globosos. Basidios y pleurocistidios no observados (Figura 76).

Figura 76. Estructuras microscópicas de Psathyrella sp.3: A. Esporas; B. Queilocistidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm

28.Psathyrella sp.4 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo humícola, con hábito gregario. Recolectado en la zona 1, en un fragmento de bosque seco tropical, durante la época de lluvias, el día 24 de septiembre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 027 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo plano y umbonado, de 30-40 mm de diámetro; de color blanco amarillento, con una mancha amarilla albaricoque en el centro del disco; superficie lisa en el centro y estriada hacia el borde; margen levantado y borde crenulado-desgarrado. Láminas de color naranja blanquecino, subadheridas al estípite, apretadas y con borde ondulado. Pie blanco y sedoso, de 70-95 x 4-6 mm, central, hueco, cilíndrico, flexuoso, fibroso. Carne blanca amarillenta, delgada y frágil (Figura 77).

Figura 77. Basidiomas de Psathyrella sp.4: A. Vista apical del píleo; B. Basidiocarpos; C. Detalles del himenio. Escala A = 2 cm; B = 2 cm; C = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas de color castaño, oblongas, truncadas y con poro germinativo. Queilocistidios hialinos, cilíndricos, utriformes a lageniformes. Basidios y pleurocistidios no observados (Figura 78).

Figura 78. Estructuras microscópicas de Psathyrella sp.4: A. Esporas; B. Queilocistidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm

29.Psathyrella sp.5 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, con hábito gregario. Recolectado en la zona 2, creciendo entre pastos, durante la época lluviosa, el 1 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 048 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo cuspidado y umbonado, de 23-25,5 mm de diámetro; color gris anaranjado; superficie estriada y seca; margen incurvado y borde rimoso. Láminas de color naranja grisáceo a marrón oscuro en ejemplares maduros, adheridas, apretadas, con borde levemente ondulado y lamélulas. Pie blanco a blanco grisáceo, de 62-64,2 x 2-3 mm, central, cilíndrico, delgado y fibroso; superficie sedosa. Carne delgada, blanda y frágil (Figura 79).

Figura 79. Basidiomas de Psathyrella sp.5: A. Vista apical del píleo; B. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas de color marrón, oblongas, con pared ligeramente engrosada y con poro germinativo (Figura 80).

Figura 80. Estructuras microscópicas de Psathyrella sp.5: A. Esporas. Escala: A = 10 µm

Strophariaceae

Género Agrocybe

Agrocybe pediades (Fr.) Fayod, Annls Sci. Nat., Bot., Sér. 7 9: 358 (1889) | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, con hábito de crecimiento disperso. Recolectado en la zona 5, rodeado de pastos, durante la época de lluvias, el 24 de septiembre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 039 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo plano a ligeramente convexo, de 18-30 mm de diámetro; de color naranja persa que se torna más oscuro hacia el centro; con superficie seca y lisa; borde entero con vestigios blanquecinos del velo parcial y margen recto. Láminas de color amarillo parduzco, adheridas al estípite, agudas, distantes, con borde ondulado y lamélulas. Pie concoloro con el himenio y la carne, de 75-80 x 3-5 mm, central, cilíndrico, flexuoso, fibroso y escamoso; base con cordones miceliales. Carne escasa, delgada y consistente (Figura 81).

Figura 81. Basidiomas de Agrocybe pediades: A. vista lateral del píleo; B. Detalles del himenio y estípite; C. Basidiocarpos. Escala: A = 1 cm; B = 1 cm; C = 2 cm

Fuente: Barrios y Abaunza (2020).

Detalles microscópicos. Basidiosporas de color marrón amarillento, elipsoides, truncadas, con pared gruesa, contenido granular y poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos, con pared delgada (algunos exhiben contenido granular). Queilocistidios hialinos, fusiformes, subcapitados a capitados. Pleurocistidios hialinos, lageniformes a utriformes (Figura 82).

Figura 82. Estructuras microscópicas de Agrocybe pediades: A. Esporas; B. Basidios; C. Queilocistidios; D. Pleurocistidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm; D = 20 µm

Fuente: Barrios y Abaunza (2020).

Distribución. Se encuentra en los departamentos de Cundinamarca (Gómez-Montoya et al., 2022) y Magdalena (Barrios y Abaunza, 2020).

30.Agrocybe retigera (Speg.) Singer, Lilloa 22: 493 (1951) [1949] | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, disperso. Recolectado en la zona 4, creciendo entre pastos durante la época de lluvias, el 16 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, JLF, CAS y ABY 055 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo cónico-convexo, semiesférico o planoconvexo y umbonado, de 20-40 mm de diámetro; color blanco grisáceo a amarillo claro; superficie ligeramente viscosa, rugosa y escrobiculada, en los basidiomas jóvenes; margen recto a levantado con borde finamente crenado. Láminas primero de color gris anaranjado, para luego tornarse marrón tabaco, subadheridas-sinuadas, membranosas en ejemplares maduros. Pie de color gris pastel, de 50-90 x 3-6 mm, central, cilíndrico, fibriloso, hueco y sin restos de velo; base ligeramente bulbosa. Carne blanca, consistente, escasa y suave (Figura 83).

Figura 83. Basidiomas de Agrocybe retigera: A. Vista lateral del píleo de ejemplares maduros; B. Detalles del himenio; C. Basidiocarpos; D. Píleo en basidiocarpos jóvenes. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 4 cm; D = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas de color marrón amarillento en KOH, oblongas, con pared gruesa y poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos y con relleno granular. Pleurocistidios polimórficos, fusiformes a lageniformes, ventricosos, globosos. Queilocistidios polimórficos, fusiformes a lageniformes, ventricosos a clavados. Pileipellis compuesta por células piriformes (Figura 84).

Figura 84. Estructuras microscópicas de Agrocybe retigera: A. Esporas; B. Basidios; C. Pleurocistidios; D. Queilocistidios; E. Elementos de la pileipellis. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm; D = 20 µm; E = 20 µm

Distribución. Ha sido registrada recientemente para Colombia por Barrios y Abaunza (2020), en el departamento del Magdalena. Además, se encuentra en Argentina (Singer y Digilio, 1951), Venezuela (Delgado y Urdaneta, 2002), Hawái (Desjardin et al., 2003) y México (Guzmán, 2003).

31.Agrocybe sp.1 |

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, disperso. Recolectado en la zona 5, creciendo entre el césped, durante la época de lluvias, el 24 de septiembre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 031 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo convexo, de 20-40 mm de diámetro; color blanco anaranjado; superficie rugosa, con pequeñas escamas marrón en los extremos; margen decurvado y borde levemente desgarrado. Láminas marrón tabaco, adheridas y con borde ondulado. Pie blanco anaranjado, de 50-80 x 2-5 mm, central, cilíndrico, hueco y fibroso; superficie cubierta con fibrillas delgadas y sin restos de velo. Carne blanca, suave y frágil (Figura 85).

Figura 85. Basidiomas de Agrocybe sp.1: A. Vista apical del píleo; B. Detalles del himenio y estípite. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas de color marrón amarillento, oblongas, con pared gruesa y poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes, tetraspóricos y con contenido granular. Queilocistidios hialinos, fusiformes a lageniformes. Pleurocistidios lageniformes, ventricosos. Pileipellis compuesta por células piriformes (Figura 86).

Figura 86. Estructuras microscópicas de Agrocybe sp.1: A. Esporas; B. Basidios; C. Queilocistidios; D. Pleurocistidios. E. Elementos de la pileipellis. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm; D = 20 µm; E = 20 µm

Tricholomataceae

Género Macrocybe

32.Macrocybe titans (H. E. Bigelow & Kimbr.) Pegler, Lodge & Nakasone, Mycologia 90 (3): 500 (1998) | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, con hábito de crecimiento disperso y gregario. Recolectado en la zona 4, rodeado de gramíneas, durante la época de lluvias, el 1 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 052 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo convexo cuando joven, de 80-100 mm de diámetro; color gris amarillento, con mancha central marrón amarillento; superficie seca, lisa y opaca; margen enrollado y borde entero. Láminas color blanco grisáceo, sinuadas, apretadas y con lamélulas. Pie concoloro con el píleo, de 70-110 x 20-38 mm, central a excéntrico, esponjoso y cilíndrico a clavado, con superficie escuamulosa. Carne blanca y gruesa (Figura 87).

Figura 87. Basidioma de Macrocybe titans: A. Vista lateral del basidiocarpo; B. Detalles del himenio y el estípite. Escala: A = 3 cm; B = 3 cm

Fuente: Luna-Fontalvo et al. (2023).

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, subglobosas a ampliamente elipsoidales, con pared lisa y delgada. No se distingue poro germinativo. Basidios hialinos, tetraspóricos, claviformes a cilíndricos. Pseudocistidios fusiformes a filiformes, con ápices algo delgados o finos (Figura 88).

Figura 88. Estructuras microscópicas de Macrocybe titans: A. Esporas; B. Basidios; C. Pseudocistidios. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm

Fuente: Barrios y Abaunza (2020).

Distribución. Está presente en los departamentos del Magdalena (Barrios y Abaunza, 2020), Antioquia y Santander (Corrales y López-Quintero, 2005; Gómez-Montoya et al., 2022; Vasco-Palacios y Franco-Molano, 2013). Se encuentra también en Estados Unidos (Bigelow y Kimbrough, 1980), México (Singer, 1990) Costa Rica, Venezuela, Ecuador, Martinica, Puerto Rico, Trinidad (Calonge et al., 2007; Pegler et al., 1998), Brasil (Battistin y Picciola, 2015) y Argentina (Ramírez et al., 2022). Cabe destacar que, de las siete especies que tiene el género, solo dos (Macrocybe titans y Macrocybe praegrandis [Berk.] Pegler & Lodge) están presentes en América (Ramírez et al., 2022).

Insertae sedis

Género Cystodermella

33.Cystodermella sp.1 | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, gregario, recolectado en la zona 3, cerca de las raíces de una fabácea, durante la época de lluvias, el 1 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magdalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 060 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo convexo cóncavo, deprimido en ejemplares maduros, de 15-30 mm de diámetro; color naranja parduzco, más oscuro hacia el centro del disco; con superficie lisa y seca, margen decurvado, levantado en ejemplares maduros y borde levemente ondulado. Láminas blancas, libres, subdecurrentes, apretadas, de borde levemente ondulado y con lamélulas. Pie de 35-38,4 x 3-5 mm, central y cilíndrico, de color blanco con vestigios del velo universal semejantes en tonalidad al píleo, que rodean la mitad inferior sin alcanzar el ápice. Carne blanca, compacta y seca (Figura 89).

Figura 89. Basidiomas de Cystodermella sp.1: A. Vista apical del píleo; B. Detalles del himenio y estípite; C. Vista lateral de los basidiocarpos. Escala: A = 2 cm; B = 2 cm; C = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas hialinas, globosas y con pared gruesa y lisa. Basidios hialinos, claviformes y tetraspóricos. Queilocistidios ausentes. Pileipellis compuesta de hifas con terminaciones claviformes, hialinos, claviformes, algunos con ápices globosos (Figura 90).

Figura 90. Estructuras microscópicas de Cystodermella sp.1: A. Esporas; B. Basidios; C. Elementos de la pileipellis. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm

Género Panaeolus

34.Panaeolus sylvaticus Silva-Filho & Cortez, en Silva-Filho, Seger & Cortez, Edinb. J. Bot. 76 (2): 303 (2019) | [picture]

Características del hábitat y sustrato. Hongo terrícola, disperso. Recolectado en la zona 2, rodeado de abundante hojarasca, durante la época lluviosa, el 1 de octubre de 2019.

Material estudiado. Colombia, Magdalena, Santa Marta, Universidad del Magalena, 11°13’18,31” N 74°11’08,80” W, JLF, CAS y ABY 046 (CBUMAG).

Descripción macroscópica. Píleo cónico-campanulado, de 12-13,4 mm de diámetro; color gris oliva (3F2), con una mancha central de color naranjo parduzco; superficie lisa; margen decurvado y borde estriado. Láminas de color gris oliva, adnatas, juntas, con borde liso y lamélulas. Pie de color marrón claro que se torna marrón parduzco hacia la base, de 37,4-40,2 x 2-3 mm, central, cilíndrico y con superficie fibrilosa. Carne escasa y delgada (Figura 91).

Figura 91. Basidiomas de Panaeolus sylvaticus: A. Vista lateral del píleo; B. Detalles del himenio; C. Basidiocarpos. Escala: A = 1 cm; B = 1 cm; C = 2 cm

Detalles microscópicos. Basidiosporas de color marrón claro a marrón oscuro, elipsoides, lisas, con pared delgada, truncadas y con poro germinativo. Basidios hialinos, claviformes a cilíndricos, con pared fina, tetraspóricos y algunas veces bispóricos. Pileipellis compuesta de células isodiamatericos, piriformes, hialinas y con pared delgada (Figura 92).

Figura 92. Estructuras microscópicas de Panaeolus sylvaticus: A. Esporas; B. Basidios; C. Vista apical de células piriformes. Escala: A = 10 µm; B = 20 µm; C = 20 µm

Distribución. Se registró por primera vez para Colombia por Barrios y Abaunza (2020). Esta especie fue descrita recientemente por Silva-Filho et al. (2019) a partir de material recolectado en Paraná, Brasil.

Discusión

Los resultados de esta investigación evidencian dos puntos clave para considerar: por un lado, como lo plantean autores como Gómez-Montoya et al. (2022), la funga colombiana es una de las más ricas en Sudamérica debido a la historia geológica y la topografía del país, además de las condiciones climáticas, una amplia gama de tipos de vegetación y la alta biodiversidad. Por otro lado, es claro y ampliamente conocido que la importancia de los macrohongos es indiscutible en todos los ecosistemas y aún sigue existiendo un conocimiento básico sobre la diversidad taxonómica, las generalidades biológicas y los patrones de distribución de estos organismos a nivel mundial (Andrew et al., 2019) y en Colombia (Gómez-Montoya et al., 2022).

Colombia alberga una gran riqueza y diversidad de hongos. Hasta el momento, la mayoría de los estudios se han concentrado en la región andina, especialmente en los departamentos de Antioquia, Valle del Cauca y Cundinamarca. En consecuencia, los ecosistemas mejor muestreados son los bosques de robles, los bosques mixtos, los bosques de tierras bajas y la selva amazónica (Gómez-Montoya et al., 2022). Por otro lado, los inventarios para los departamentos de la región Caribe, como Atlántico, Cesar, Casanare, Guainía y el Archipiélago de San Andrés, Providencia y Santa Catalina aún quedan pendientes (Gómez-Montoya et al., 2022).

Entre la literatura nacional, recientemente se ha publicado un listado de especies que refleja la exhaustiva búsqueda de información sobre la diversidad del phylum Basidiomycota, que en total agrupa 24 órdenes, 96 familias, 418 géneros y 1.353 especies en el país. El orden Agaricales, en particular, registra aproximadamente unas 700 especies, un poco más de la mitad de las que contiene el phylum, representada mayormente por la familia Marasmiaceae, que congrega a 110 especies: el mayor número dentro de Agaricales registrados para el país según Gómez-Montoya et al. (2022).

Si se revisa detenidamente lo que se conoce sobre los macrohongos en las distintas regiones biogeográficas de Colombia, tal como se mencionó anteriormente, los departamentos que conforman la región andina son los mejor representados (Gómez-Montoya et al., 2022; Vasco-Palacios y Franco-Molano, 2013). Sin embargo, respecto a la región Caribe el panorama es totalmente distinto. Así pues, debido al bajo número de registros de macrohongos en este territorio, se evidencia la necesidad de llevar a cabo más exploraciones en la zona, enfocándose especialmente en los departamentos de Córdoba, que hasta el momento solo registra cuatro especies; La Guajira, con tres; Atlántico, con dos; Sucre, con ocho; Bolívar, con diez, y Cesar, con 41. En este contexto sobresale el departamento del Magdalena, con 212 especies de macrohongos identificadas por Gómez-Montoya et al. (2022), entre las cuales se cuentan 32 especies de Agaricales (Vasco-Palacios y Franco-Molano, 2013).

A los trabajos anteriores mencionados se adicionan los publicados recientemente por Luna-Fontalvo et al. (2021, 2023) en las tierras bajas de la vertiente noroccidental de la Sierra Nevada de Santa Marta. Según Franco-Molano et al. (2010), Vasco-Palacios y Franco Molano (2013) y Gómez et al. (2022), esta es la zona más abundante con relación al número de especies de macrohongos en la costa Caribe, donde se registran 15 nuevos registros para el Magdalena, entre ellos siete nuevos para Colombia, lo que aumenta el número de Agaricales del departamento a 47 y de la región Caribe a 227.

La falta de exploración en el Caribe responde a razones de diversa índole. Dos de ellas son el poco interés en el grupo taxonómico y la carencia de financiamiento para realizar las exploraciones y recolectar material biológico, a lo que se suma la falta de micólogos y taxónomos especialistas en la identificación de los hongos para generar datos confiables. De igual forma contribuye el difícil acceso a determinadas zonas o territorios, ya sea por la geografía o por temas de seguridad, además de la escasa disponibilidad o la inexistencia de colecciones micológicas en la región. Se requiere, por lo tanto, prestar especial atención a los inventarios, debido a que en las tierras bajas (0-1.000 m s. n. m.) de los departamentos que conforman la región Caribe predomina el bosque seco tropical, del que ya se sabe que es uno de los ecosistemas más degradados, perturbados o altamente amenazados (Pizano y García, 2014).

Con el trabajo aquí desarrollado se describen y registran fotográficamente las especies de macrohongos recolectadas y se enriquece la colección micológica en el CBUMAG. De cualquier modo, es necesario continuar con la exploración y la formación de micólogos para fortalecer esta línea de investigación. Asimismo, se resalta, en relación con estos trabajos, que varios ejemplares se registraron como nuevas citas para la región e incluso para Colombia (Luna-Fontalvo et al., 2021, 2023) y además fueron recolectados en un área de reducida superficie, lo que pone en evidencia las estimaciones sobre la alta diversidad de macrohongos que aún falta por identificar en la región Caribe.

Específicamente, en el campus de la Universidad del Magdalena, la familia de macrohongos más diversa es Agaricaceae, con 18 especies. Las 17 especies halladas restantes están repartidas entre Marasmiaceae, Pluteaceae, Psathyrellaceae, Strophariaceae y Tricholomataceae, y dos de ellas —Cystodermella sp.1 y Panaeolus sylvaticus— se declararon en posición incierta. En este sentido, cabe destacar que entre las 18 especies de Agaricaceae identificadas dentro del campus se contaron siete nuevos registros para el Caribe colombiano, publicados por Luna-Fontalvo et al. (2021). Además, dos de ellas —Leucoagaricus lilaceus y Leucoagaricus roseilividus— fueron novedades para Colombia. Por lo tanto, a las 45 especies de Agaricales registradas para el país por Gómez-Montoya et al. (2022) se suman las dos especies mencionadas, quedando 47 en territorio colombiano.

Aunque la familia Marasmiaceae es la más numerosa del orden Agaricales para Colombia, con más de 110 especies según Gómez-Montoya et al. (2022), en el campus se identificó hasta nivel específico a Marasmius haematocephalus y la morfoespecie Marasmius sp.1. Recientemente, Oliveira et al. (2022) publicaron un trabajo donde en principio señalan a la primera como una especie de distribución pantropical que en realidad se trataría de un complejo de especies que contendría a especies crípticas. Ahora bien, sobre la base del análisis molecular, los autores indican que M. haematocephalus, en sentido estricto, es mayormente neotropical y que está relacionada cercanamente con especies de África tropical y de la región indomalaya, lo que lleva a reconocer nuevas especies dentro del complejo de M. haematocephalus (Oliveira et al., 2022). En esa medida, el material perteneciente a Marasmius recolectado dentro del campus fue identificado, en efecto, como M. haematocephalus toda vez que las características morfológicas microscópicas y macroscópicas concuerdan con lo que proponen Oliveira et al. (2022); sin embargo, queda pendiente por identificar a nivel específico a Marasmius sp.1, el cual muestra características distintivas de M. haematochephalus.

Otro aspecto relevante y que necesita revisión es el género Psathyrella, el más numeroso en el campus con seis especies, de las cuales solo una se pudo identificar hasta nivel específico (Psathyrella vanhermanii). Por lo tanto, quedan pendientes de identificación cinco morfoespecies con diferencias claras y definidas suficientes como para tratarlas como taxones distintos de Psathyrella. Este género cuenta con cinco especies en Colombia, pero el material recolectado en el campus universitario no coincide con ninguna de las especies citadas para Colombia por Gómez-Montoya et al. (2022).

Con relación a la distribución de las especies registradas en este trabajo, es difícil determinarlas o realizar comparaciones debido a la falta de exploración y de información en el país. Sin embargo, varias especies están ampliamente distribuidas en América. Tal es el caso de Podaxis pistillaris, que se distribuye desde Estados Unidos y México hasta Brasil y Argentina, creciendo en bosques secos o estacionales, principalmente en épocas lluviosas. Asimismo, Leucoagaricus lilaceus se encuentra desde México hasta Argentina, Brasil y Paraguay, y Leucoagaricus rubrotinctus, en los bosques secos como los del Atlántico, en Brasil o en México. Otros grupos que se observan con frecuencia en los jardines son Chlorophyllum, que crece entre la grama, o Leucocoprinus cepistipes, que se propaga fácilmente en materas. Por supuesto, es preciso anotar que una de las limitantes para la exploración y recolección en estos ecosistemas de bosques secos son las lluvias, pues los macrohongos no están a la vista en cualquier época del año, sino que es necesario que comiencen las precipitaciones para su recolección.

Este catálogo representa una aproximación al conocimiento sobre la diversidad de Agaricales en el campus de la Universidad del Magdalena, en la ciudad de Santa Marta. Al respecto, es relevante mencionar que este trabajo no solo contribuye con un listado de especies, sino que también aporta descripciones detalladas, fotografías y dibujos que evidencian los caracteres de cada una de ellas, lo que permitirá el reconocimiento de los macrohongos del orden mencionado. No obstante, además de los hallazgos enumerados en este trabajo, queda pendiente una gran tarea de exploración y clasificación, lo que deja abierta la propuesta para que otros estudiantes y profesionales se sumen a esta iniciativa para continuar y completar esta investigación.

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Índice de especies identificadas en orden alfabético

Agaricus griseorimosus | 40
Agaricus sp.1 | 41
Agrocybe pediades | 92
Agrocybe retigera | 94
Agrocybe sp.1 | 96
Chlorophyllum hortense | 43
Chlorophyllum molybdites | 44
Chlorophyllum sp.1 | 46
Cystodermella sp.1 | 100
Lepiota sp.1 | 48
Lepiota sp.2 | 49
Leucoagaricus lilaceus | 51
Leucoagaricus roseilividus | 53
Leucoagaricus rubrotinctus | 55
Leucoagaricus sp.1 | 57
Leucoagaricus sp.2 | 59
Leucoagaricus sp.3 | 60
Leucocoprinus birnbaumii | 62
Leucocoprinus cepistipes | 63
Leucocoprinus sp.1 | 67
Leucocoprinus venezuelanus | 65
Macrocybe titans | 98
Marasmius haematocephalus | 71
Marasmius sp.1 | 72
Panaeolus sylvaticus | 102
Pluteus petasatus | 78
Podaxis pistillaris | 69
Psathyrella sp.1 | 82
Psathyrella sp.2 | 84
Psathyrella sp.3 | 86
Psathyrella sp.4 | 88
Psathyrella sp.5 | 90
Psathyrella vanhermanii | 80
Volvariella cubensis | 74
Volvariella sp.1 | 76

Los autores

Alejandra Barrios Yepes

Bióloga, egresada de la Universidad del Magdalena, miembro fundador e integrante del Team Fungi, apasionada por la micología. Cuenta con experiencia en la taxonomía de hongos Agaricales y gestión de proyectos para el desarrollo del turismo científico. Promotora del micoturismo en el departamento del Magdalena.

Cristian Abaunza

Biólogo, egresado de la Universidad del Magdalena, Santa Marta, Colombia. Integrante del Team Fungi. Cuenta con experiencia en identificación de hongos Agaricales y caracterización de especies vegetales con potenciales agroforestales.

Jorge Alberto Luna Fontalvo

Biólogo, magister en Ciencias, mención Microbiología, y candidato a doctor en Ciencias Agrarias de la Universidad Austral de Chile. Profesor Asociado e investigador de la Facultad de Ciencias Básicas de la Universidad del Magdalena. Desde el 2010 se desempeña como docente universitario de Microbiología y Micología. Sus estudios se enfocan en macromicetos Agaricales, hongos endófitos de especies vegetales de interés agronómico y biodegradación de residuos agroforestales y su aplicación ambiental.

María A. Negritto

Bióloga, doctora en Ciencias Biológicas. Profesora Titular de la Facultad de Ciencias Básicas de la Universidad del Magdalena y miembro integrante del grupo de investigación MIKU. Desde hace 30 años es docente universitaria de Taxonomía, Morfología y Diversidad vegetal. Actualmente, se dedica a desarrollar estudios sobre la biodiversidad de grupos taxonómicos poco conocidos y a las colecciones biológicas en la región Caribe.